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welcher ich bei Parechinus miliaris in einigen Beziehungen so gute Resultate gewonnen hatte, zu applizieren. Zu 

 meinem Erstaunen zeigte es sich aber, dass die Methylenblaufärbung bei diesen anderen Seeigeln im allgemeinen 

 nicht gelang. Die blaue Farbe veränderte sich sogleich in eine rotviolette, wie dies auch bei vielen anderen 

 meerbewohnenden Tieren der Fall ist. Wie ich schon früher bemerkt habe, färbt sich z. B. bei Würmern, die 

 zusammen in derselben Meeresbucht leben, das Nervensystem der einen Sorte sehr schön, dasjenige der anderen aber gar 

 nicht; das Nervensystem von Nereis diversicolor färbt sich somit sehr gut, dasjenige von Arenicola marina, welche 

 in derselben Bucht lebt, gar nicht. Sowohl bei diesen Tieren, wie bei den fraglichen Seeigeleiern ; versuchte ich 

 oft, die Methylenfarbe durch Zusatz von verschiedenen Säuren und Alkalien so zu modifizieren, dass die blaue Farbe 

 sich erhalte und die Strukturen färbe, aber im ganzen ohne Erfolg. Nur in einigen Fällen erhielt ich an den 

 Eiern von Echinus esculentus (Taf. IX, Fig. 1 und 2), von Paracentrotus lividus (Fig. 3 und 4 der Taf. IX) und 

 von Sphaerechinus granularis (Fig. 5 und 6) ein deutliches Mikropyleloch an der gelatinösen Hülle und an der 

 äusseren Fläche der letzteren die Andeutung einer eben solchen körnigen Struktur wie bei Parechinus miliaris. Bei 

 Echinocyamus erhielt ich auch hin und wieder solche runde Löcher in der Hülle (Fig. 7 u. 8), aber nie mit solcher 

 Deutlichkeit und Schärfe wie bei dem Parechinus. In manchen Fällen hing durch das Loch ein Protoplasmatropfen 

 hervor, wie in Fig. 3. Ohne Zweifel ist, wie Boveri ja schon längst durch Zusatz von Tusche zu den Eiern von 

 Paracentrotus lividus nachgewiesen hat, bei allen diesen Eiern eine Mikropyle vorhanden. Die Meylenthblaumethode 

 gibt aber, wie erwähnt, gar nicht so gute Färbungsresultate wie an den Eiern von Parechinus miliaris. Die Rosanilin- 

 färbung versagt eigentümlicherweise im ganzen auch bei jenen anderen Seeigeln, während sie bei Parechinus 

 schöne Färbungsbilder gibt. 



Was die Dottermembran und ihre Entstehung und Abhebung betrifft, gilt auch für die anderen Seeigeleier 

 die für die Eier des Parechinus miliaris oben gelieferte Darstellung. 



Die Einlagerung der Dotterkörner in das Protoplasma geschieht in derselben Weise wie bei Parechinus mi- 

 liaris, indem sie immer zahlreicher in das Mitomgeflecht in verzweigten Balken abgelagert werden. Diese zwischen 

 den hellen Paramitomkanälen befindlichen Deutoplasmabalken sind von dem verästelten, gekörnten Mitomgeflecht 

 reichlich umsponnen. In den Fig. 11 und 12 sieht man in jungen Eiern von Echinus esculentus an den rot- 

 gefärbten Partien diese Ablagerung in verschiedenen Stadien; um diese Deutoplasmapartien ist das Mitomgeflecht 

 gewöhnlich reichlicher und liegt hier oft zu dickeren Haufen zusammengedrückt. Die Fig. 15 gibt von Paracen- 

 trotus lividus einen Medianschnitt eines reifen Eies mit dem kleinen Eikern und der fertigen Deutoplasma-Ein- 

 lagerung in den Balken. Dies alles stimmt ganz mit den Verhältnissen bei Parechinus miliaris überein, weshalb 

 ich nicht weiter hierauf eino-ehe. 



B. Die Eier der Seesterne. 



Taf. X. 



Bei diesen Tieren habe ich v. a. die Eier von Asterlas rubens L. untersucht. Ausserdem benutzte ich zum 

 Vergleich auch die Eier von Astropecten irregularis (Penn.), Solaster papposus (Fabr.), Ophiothrix fragilis (0. F. Müll.) 

 und Antedon petasus (Düb. & Kon.). Ich werde mich besonders an die Verhältnisse bei Asterias halten, aber 

 auch sie möglichst kurz besprechen, und im übrigen auf diejenigen bei Parechinus miliaris hinweisen. 



Die jungen Eier im Ovarium liegen auch bei Asterias an den Wänden der Säckchen oder in ihrer nächsten 

 Nähe, mehr oder weniger von Nährzellen umschlossen. Die Fig. 1 und 2 der Taf. X stellen Partien von Schnitten 

 solcher Säckchen dar, in denen unreife Eier in verschiedenen Stadien vorliegen; in Fig. 1 sieht man rechts und 

 links die jüngsten als kleine, runde Kugeln mit sparsamen Mitomfasern in der Paramitomsub stanz; dann folgen 

 sowohl in dieser Figur, wie in Fig. 2, die grösseren, erwachseneren Formen mit denselben, aber weit zahlreicheren 

 Mitomfasern in dem ebenfalls stark vermehrten Paramitom und dem immer vergrösserten Kern (Keimbläschen), in 

 welchem die kömigen Chromatinfäden und das vergrösserte Kernkörperchen — teilweise mit hellen Alveolen ver. 

 sehen — zu bemerken sind. Von einigen dieser Eier sind nur kleinere Schnittpartien wiedergegeben, weshalb der 

 Kern mit seinem Inhalt nicht sichtbar ist. Das Mitom besteht hier, wie in jungen Parechinuseiern, aus einem 

 Geflecht heller Fasern mit ihnen angehängten, dunkel gefärbten Körnern. Man kann im perspektivischen Bilde 

 im Mikroskope, beim Heben und Senken des Tubus, die Fasern zuweilen recht weit verfolgen und sieht sie sich 

 hin und wieder dichotomisch teilen und verästeln; eine netzartige Beschaffenheit findet man aber nicht. Bei der 



