146 Dr. H. Conradi, 



dieser Methode gelang es in den meisten Fällen , eine aseptische Auto- 

 lyse der meisten tierischen Organe durchzuführen. Nur bei asep- 

 tischer Autolyse der Leber trat wiederholt eine Bakterienentwickelung 

 auf, ohne dafs hier methodische Fehler untergelaufen wären. Weitere 

 Untersuchungen werden dieser Beobachtung noch nachzugehen haben. 



Die Keimfreiheit des autolysierten Organs wurde durch Ver- 

 arbeitung gröfserer Mengen des ausgeströmten Saftes und der Organ- 

 substanz zu Agar- und Gelatineplatten sowie durch Übertragung 

 in 500 ccm gewöhnlicher und mit Paraffin überschichteter Bouillon 

 sichergestellt. Die bakteriologische Untersuchung beschränkte sich 

 aber nicht darauf, etwa erst nach mehrtägiger Autolyse die Prüfung 

 des Keimgehaltes vorzunehmen. Vielmehr wurde schon in den 

 ersten Stunden der Autolyse mit der Abimpfung begonnen und 

 diese in mehreren Versuchsreihen systematisch von zwei zu zwei 

 Stunden durchgeführt. Aus Versuchen, über welche ich anderen 

 Ortes berichten werde, geht hervor, dafs bei Autolyse der Organe 

 Substanzen entstehen, welche baktericide Eigenschaften besitzen. 

 Trifft man nun nach mehrtägiger Autolyse keine Bakterien an, so 

 ist keineswegs auszuschlief sen , dafs letztere von Anfang an nicht 

 vorhanden gewesen seien. Vielmehr könnte die später auftretende 

 baktericide Wirkung des autolysierten Organs eine anfänglich vor- 

 handene Bakterienvegetation zerstört haben. Daher erscheint es 

 geboten, die bakteriologische Untersuchung der Organe, welche 

 der aseptischen Autolyse unterworfen werden, auch innerhalb der 

 ersten 24 Stunden vorzunehmen. Für die Blutversuche kam fast 

 durchgehends der reichlich ausgeströmte Saft des autolysierten 

 Organs in Anwendung. In einigen Fällen wurde jedoch auch der 

 'Autolyserückstand des Organs durch die Buchnersche Presse 

 ausgepreist und der Preissaft benutzt. 



Was die antiseptische Autolyse der Organe anlangt, so folgten 

 wir hier den bewährten Vorschriften, die von Salkowski und 

 später von M. Jacoby angegeben wurden. 



In der Mehrzahl der Fälle wurden 500 g des betreffenden , fett- 

 befreiten Organs zerkleinert und mit 1000 ccm 0,6 proz. Kochsalzlösung 

 versetzt. Dann ward so viel Toluol hinzugefügt, dafs nach tüchtiger 

 Mischung eine zirka 5 ccm hohe Toluolschicht die Organfiüssigkeit be- 

 deckte. Bei längerem Aufenthalte im Brutschranke bei 37° mufste das 

 Toluol öfters erneut und für gehörige Mischung desselben gesorgt werden. 

 Vorteilhaft erschien uns auch die kombinierte Anwendung von Toluol 

 und Chloroform : In einen Liter Organflüssigkeit giebt man zunächst 

 zirka 30 ccm Chloroform, danach ebenso viel Toluol hinein. Die Organ- 

 fiüssigkeit wird dann von einer unteren Chloroform- und einer oberen 

 Toluolschicht eingeschlossen. Da nun das Toluol die Tendenz hat, sich 



