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Boris Sukatschoff, 



verschiedene Autoren Arbeiten veröffentlichten, die den gleichen Ge- 

 genstand behandeln; es sind die Untersuchung von Filatoff (1900) 

 und die Darstellung von G. Brandes (1901) in seiner Bearbeitung 

 von Leuckart »Die Parasiten des Menschen« (6. Lieferung, I. Bd.^ 

 2. Aufl.). Da die Angaben und Deutungen dieser Forscher in man- 

 chen Punkten mit meinen Befunden nicht in Einklang zu bringen 

 sind, so will ich in dieser Schrift die Kesultate meiner Untersuchung, 

 so weit sie sich auf die Furchung und Bildung der embryonalen An- 

 lagen von Nephelis erstrecken, mittheilen. 



Xephelis hält in den Aquarien gewöhnlich sehr gut aus, und legt sehr 

 gern — wenn keine glatten Gegenstände, besonders keine Wasserpflanzen mit 

 auch nur ganz kleinen Blättern, wie z. B. Lemna in den Aquarien vorhanden 

 sind — seine Kokons, in denen in bekannter Weise die Eier von einer gallertigen 

 Eiweißmasse umhüllt sind, an die Wände ab. Die Kokons lassen sich leicht mit 

 einem Skalpell ablösen; dann kann man bei schwacher Vergrößerung und bei 

 durchfallendem Licht die im Kokon liegenden Eier sehen, ja manchmal, wenn 

 der Kokon sehr abgeplattet und ziemlich durchsichtig ist. sogar mit einer ge- 

 wissen Sicherheit das Entwicklungsstadium der Eier bestimmen. Auch die unter 

 natürlichen Bedingungen im Freien abgelegten Kokons wurden zur Untersuchung 

 verwandt. Sie waren besonders für spätere Stadien von Werth, bei denen die 

 ursprünglich sehr zähe Eiweißmasse schon ziemlich dicht geworden ist, so dass 

 die in ihr eingeschlossenen Embryonen beim Abtrennen des Kokons von den 

 Steinen ■ — resp. anderen Substraten — und Herauspräpariren der Eiweißmasse 

 w^enig geschädigt werden. Dies ist nämlich nicht der Fall bei frisch abgelegten 

 Kokons, die noch sehr wenig gebräunt und sehr klebrig sind und deren Inhalts- 

 masse noch sehr flüssig ist; diese biegen sich sehr leicht, wobei die Eier 

 leicht verletzt werden, besonders die ganz jungen Larven, bei denen schon die 

 Deutolecithbildung begonnen hat. 



Nachdem die ungefähr erwünschten Stadien aufgefunden waren, wurde der 

 Kokon am Eand aufgeschnitten, die Eiweißmasse vorsichtig herauspräparirt und 

 sammt den in ihr eingeschlossenen Eiern in die Fixirungsflüssigkeit gelegt. Als 

 Fixirungsmittel für Totalpräparate benutzte ich fast immer Chromessigsäure, 

 oder manchmal die FLEMMixG'sche Mischung (Chromosmiumessigsäure), die wenig- 

 stens für die Furchungsstadien nichts zu wünschen übrig ließ. Die für Schnitte 

 bestimmten Eier und jungen Larven wurden in einer koncentrirten Sublimat- 

 lösung fixirt, der ich 3-5 o'o starker (45 o/oiger) Salpetersäure zusetzte i. Der 

 Zusatz der Salpetersäure vermindert die Brüchigkeit, welche die Entoderm- 

 zellen und das verschluckte Eiweiß, sowie die ganze Eiweißmasse schon im 

 Alkohol annehmen. Nach bis sechsstündiger Wirkung der Fixirungsflüssigkeit 

 wurden die Objekte in Wasser überführt und aus dem Eiweiß mittels fein zu- 

 gespitzter Präparirnadeln herausgenommen, falls sie für Totalpräparate bestimmt 



1 Filatoff (1900. p. 42 empfiehlt für Schnitte Fixirung mit Chromessig- 

 säure; doch gelang es mir nicht damit gute Resultate zu erzielen. Die Eiweiß- 

 masse wurde schon im Alkohol, und besonders im Paraffin auf dem Wärmeschrank 

 zu hart und brüchig, was Filatoff's Angabe widerspricht. 



