Ein Beitrag zur Embryologie der Süßwasserdendrocölen. 275 



Hauptaugenmerk auf die Lösung dieser uns bis heute vorliegenden 

 Widersprüche gerichtet war. Die Anregung hierzu gab mir mein 

 hochverehrter Lehrer Prof. Dr. J. v. Kennel in Dorpat. Für die 

 freundliche Förderung meiner Arbeit bin ich ihm zu aufrichtigem Dank 

 verpflichtet, ebenso den Professoren Dr. C. Chun und Dr. 0. zue 

 Strassen und Herrn Dr. E. Woltereck in Leipzig, wo ich diese 

 Arbeit fortgeführt und beendet habe. Ich bin mir der mannigfachen 

 Lücken in dieser Abhandlung sehr wohl bewußt; äußere Umstände 

 veranlassen mich jedoch, die Arbeit abzuschließen. 



Das Objekt meiner Untersuchungen war in erster Linie Planaria 

 torva (M. Schultz), das in der Umgegend von Dorpat bei weitem am 

 häufigsten vorkommende Turbellar. Nebenbei habe ich, namentlich 

 was die Eireifung anbetrifft, auch die verschiedensten Stadien von 

 Dendrocoelum lacteum und einige von PlanaQ^ia polychroa untersucht. 

 Hierbei konnte ich mich von einer völligen Ubereinstimmung ihrer 

 Entwicklung in allen Hauptpunkten überzeugen, so daß ich sehr 

 wohl dort, wo meine Beobachtungen an Planaria torva Lücken auf- 

 weisen, die entsprechenden Stadien der genannten beiden andern Süß- 

 wassertricladen zur Aushilfe heranziehen kann. 



Was meine Untersucliungsmetlioden anbelangt, so habe ich aus- 

 schließlich mit Schnittserien gearbeitet. Die von Metschnikoff, besonders aber 

 von IijiMA und Hallez angewandte Methode, die ganz jungen Embryonen 

 durch Schütteln in verdünnter Essigsäure von den anhaftenden Dotterzellen 

 nach Möglichkeit zu befreien und dann gefärbt oder ungefärbt in toto unter 

 dem Deckglase zu untersuchen, gestattet kein so sicheres Urteil über feinere 

 Verhältnisse, wie eine Schnittserie durch einen unzerteilten Kokon, wobei außer- 

 dem die Embryonen durch die Schnittmethode weder deformiert, noch unnötig 

 von den anliegenden Dotterzellen getrennt werden. Um ein rasches Eindringen 

 der Eeagentien in den von einer starken Schale umgebenen Kokon zu ermög- 

 lichen, habe ich letzteren stets anstechen müssen. Es ist bei einiger Übung 

 nicht schwer, mit zwei sehr spitzen Nadeln unter Wasser oder physiologischer 

 Kochsalzlösung ein mehr oder weniger großes Fenster in die Kokonschale einzu- 

 reißen, ohne den Inhalt zu lädieren. (Hierbei ist es am besten, die eine Nadel nicht 

 zu tief einzustechen, sie sodann gegen den Boden des Schälchens zu drücken 

 und mit der andern Nadel den Kokon zu befreien. Es ist ratsam, diese Proze- 

 dur unter einer Präparierlupe vorzunehmen.) Metschnikoff hat die gehärteten 

 Kokons geschält. Das ist nicht in allen Fällen notwendig, da ich trotz der 

 -harten Schale mit quergestelltem Mikrotommesser Bandserien von 7 — 10 ,a Dicke 

 schneiden konnte. Um meine dünneren Schnitte von 4 und 5 u Dicke herzu- 

 stellen, schälte ich die in Paraffin eingeschmolzenen Kokons unter einer Lupe 

 und bettete sie nochmals in Paraffin ein, eine Methode, bei der eine Verletzung 

 des Inhalts ausgeschlossen ist. Einige Vorsicht ist hierbei geboten insofern, als 

 die Eizellen oft sehr dicht unter der Schale liegen. Nachdem das zarte Syn- 

 cytium der kugeligen Embryonen sich mit der Ektodermmembran umgeben hat 



18* 



