Die Metamorphose von Mytilicola intestinalis Steuer. 79 



in welchem sie sich bei guter Durchlüftung lange halten. Bei der 

 Prüfung auf den Gehalt von Mytilicola wird zunächst der hintere, dann 

 der vordere Schließmuskel mit einem Skalpell durchschnitten und die 

 beiden Schalenhälften auseinander geklappt. In vielen Fällen sieht 

 man bereits ohne weiteren Eingriff den Darm stellenweise rot gefärbt, 

 was auf Anwesenheit eines Parasiten hindeutet. Wenn ich auch im 

 allgemeinen nicht sagen kann, daß gewisse Partien von Mytilicola be- 

 sonders bevorzugt würden, so springt das Auftreten des Parasiten im 

 Mittel- und Dünndarm der Muschel mehr in die Augen, weil die beiden 

 ihrem größeren Teile nach nicht von der Leber umgeben werden. Be- 

 kanntlich macht der Darm von Mytilus eine Doppelschleife (Th. List, 

 Die Mytiliden: Fauna und Flora des Golfes von Neapel. 27. Monogr. 

 1902). Um die Parasiten aus dem Darme zu erhalten, empfiehlt es sich, 

 ihn mit der Leber aus der Muschel heraus zu schneiden und auf eine 

 größere flache Glasschale mit Seewasser zu legen. Während die frei- 

 liegenden Darmteile leicht mit einer Schere aufgeschnitten werden 

 können, fordert die Leberregion sorgfältiges Zerzupfen. Für meine 

 Zwecke galt es vor allem, Weibchen mit Eiersäcken aufzufinden, welche 

 Aufgabe durch die Größe der Tiere (6 — 10 mm) leicht gelöst wird. 

 Schwieriger ist das Aufsuchen der jüngeren Formen, welche zudem, 

 daß sie sehr klein sind, noch des roten Farbstoffes entbehren, den die 

 ausgewachsenen Tiere besitzen, und die daher sehr leicht übersehen 

 werden. Dazu ist ziemliche Übung des Auges notwendig. 



Den Weibchen wurden die Eiersäcke abgeschnitten, in kleinere 

 Glasaquarien gegeben und diese zugedeckt. Die Entwicklung von 

 Bakterien ist nur schwer zu verhindern und zum Gedeihen der Kulturen 

 ist peinliche Reinlichkeit notwendig. So bewährte es sich z. B. nicht, 

 älteres Seewasser aus dem Institute zu verwenden. 



Je nach dem Reifezustande der Eiersäcke kommen mehr oder 

 minder rasch die ersten Larven an die Oberfläche, welche sich zufolge 

 ihres positiven Heliotropismus an der dem Fenster zugekehrten Glas- 

 seite ansammeln. Spätere Entwicklungsstadien verlieren den Helio- 

 tropismus und müssen dann einzeln aus dem Gefäß mit einer Pipette 

 gefangen werden. 



Wie A. Steuer bereits in seiner eingangs citierten Publikation an- 

 führt, bietet die beste Untersuchungsmethode das Beobachten am 

 lebenden Tiere. In Präparaten hebt sich erstens das Chitin sehr schlecht 

 vom umgebenden Kanadabalsam bzw. Nelkenöl ab und fürs zweite 

 treten trotz sorgfältigster Behandlung stets Schrumpfungen ein, welche 

 falsche Bilder verursachen. Dies gilt natürlich insbesondere für die 



