Beiträge zur Kenntnis der Leuchtorgane einheimischer Lampyriden. H 



wandte ich eine Osniiumsäurelösung von 1:250 — 1:600 an. Bei einer solchen 

 Schwärzung entgehen jedoch die feinen Tracheenkapillaren leicht der Beobachtung. 

 Bislang war keine Methode bekannt, um eine intensive Schwärzung der Tracheen- 

 kapillaren selbst zu erzielen. Nach vielen Versuchen gelang es mir nun, sie 

 schwarz zu färben, so daß sie sich von dem umliegenden Gewebe deutlich ab- 

 heben. Zu dem Zwecke wurden mit Alkohol oder Sublimatessigsäure konservierte 

 Leuchtorgane mit Boraxkarmin gefärbt und mit angesäuertem Alkohol extrahiert, 

 darauf 24 Stunden in destilliertem Wasser ausgewaschen, über Nacht in eine 

 wässerige Überosmiumsäurelösung von 1 : 400 gelegt, dann direkt in rohen Holz- 

 essig übertragen, auf etwa 8 — 10 Stunden. Darauf wurde das Objekt mit 

 destilliertem Wasser ausgewaschen, mit Alkohol gehärtet und in Paraffin einge- 

 bettet. Die Kapillaren traten auf solchen Präparaten (Taf. IL Fig. 2) sehr scharf 

 als tief schwarze Fäden hervor, während die Tracheenendzellen und ihre Fort- 

 sätze, sowie die Leuchtzellen kaum eine Spur von Schwärzung zeigten. Als 

 Plasmafärbung leistete mir bei solchen Präparaten Bleu de Lyon gute Dienste. 

 Die erwähnte Methode hat vor andern den Vorzug, daß sich die Schwärzung 

 auf die Kapillaren beschränkt, infolgedessen der Bau der Tracheenendzeilen zu 

 erkennen ist. Insofern bildet dies Verfahren ein Gegenstück zu den allein mit 

 Osmiumsäure behandelten Präparaten. Daß nach dieser Methode die Kerne vor 

 der Einwirkung der Osmiumsäure gefärbt werden können, und daß sie auch mit 

 Erfolg an konserviertem Material verwertet werden kann, erhöht ihren Wert. 

 Letzterer Umstand ist um so wesentlicher, als die Flugzeit der Lampyriden 

 kurz ist. 



Noch auf eine andere Weise gelang es mir, die Tracheenkapillaren intensiv 

 schwarz zu färben. Zu dem Zwecke legte ich lebende Lampyriden etwa 

 3 — 4 Stunden in Osmiumsäurelösung (1:750), präparierte hierauf die Organe aus 

 dem noch lebenden Tiere, konservierte sie mit konzentrierter Sublimatlösung, 

 der ich 1% Kochsalz zufügte, wusch dann mehrere Tage mit wässeriger und 

 alkoholischer Jodjodkaliumlösung aus, bettete die Objekte in Paraffin ein und 

 legte die mit destilliertem Wasser ausgewaschenen Schnitte in Goldchlorid (1%) 

 etwa 24 Stunden, schwenkte sie in destilliertem Wasser ab und reduzierte in 

 Ameisensäure (1%) in diffusem Licht etwa 8 — 10 Stunden. Auf die Weise er- 

 hielt ich Präparate (Taf. I, Fig. 5), auf denen in den Kapillaren und an der 

 Spiralfaser der Tracheenstämme tiefschwarze Körnchen perlenartig angeordnet 

 sind. Die Leuchtzellen sind ziegelrot, die Tracheenendzellen dunkelrot gefärbt, 

 ebenso ihre Fortsätze und die Kerne. Darin liegt gerade ein wesentlicher 

 Vorzug vor der vorigen Methode, daß solche Bilder gestatten, die Fortsätze der 

 Tracheenendzellen und die Kapillaren im Zusammenhang zu studieren. Die 

 Schwärzung der Kapillaren gelang mir sowohl in den Organen der Männchen 

 von Lampyris splendidula als auch der Weibchen von Lampyris noctiluca. 



Sehr große Schwierigkeiten bereitet das Studium der in den Leuchtorganen 

 verlaufenden Nerven. Fast ohne Erfolg versuchte ich die Goldimprägnationen 

 nach Apäthy, Cohxbeim, Eanvier und Viallanes. Wohl waren auf solchen 

 Präparaten die Nerven mit ihren Kernen zu sehen. Aber es fehlte ein Kriterium 

 für die Erkennung der feinsten Nervenendigungen, da sich auch Zellgrenzen und 

 Tracheenfortsätze wie Nerven gefärbt hatten. Auch Golgis Methode führte 

 nicht zu den gewünschten Eesultaten. Ferner brachten mich Versuche mit 

 Silberchromat, sowie Injektionen von Methylenblau (2 o/o — 1:1500) beim Studium 

 der Nerven nicht weiter. Schließlich versuchte ich die Nerven noch mit mono- 

 oder dichromsaurem Silber in Verbindung mit Überosmiumsäure zu färben, aber 



