über die Entwicklung der Neritina fluviatilis Müll. 



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Es gelingt dies jedocli schwer , weil die frischen Cocons , wie erwähntj 

 noch weich sind und desshalb beim Ablösen leicht gedrückt werden. 

 Auch die abgelösten älteren Cocons gehen in Aquarien oder Gläsern 

 bald zu Grunde ; und es schien mir die Hauptursache des Verderbens 

 das üppige Wuchern eines Fadenpilzes zu sein , der die Kapseln dicht 

 umspinnt, vielleicht auch in dieselben eindringt. Ähnliches hat auch 

 Gegenbaur bei den Eiern von Limax beobachtet. 



Dagegen gelang es in einer Anzahl von Eikapseln, die auf Tichogonien 

 saßen und mit diesen in ein Aquarium gebracht wurden, die Embryonen 

 lange am Leben zu erhalten. 



Die Eiablage der Neritina erstreckt sich über die Zeit von Mitte 

 April bis Anfang Oktober. Trotzdem wird keine besonders große Zahl 

 von Embryonen erzeugt, was damit im Zusammenhang steht, dass auf 

 einmal immer nur ein Cocon abgelegt wird; und in diesem jedes Mal 

 nur ein Embryo zur Ausbildung gelangt. 



Zur Untersuchung der frischen Eier und Embryonen diente die 

 von BüTscHLi (21) angegebene Eiweißlösung (1 Theil Eiweiß, i Theil 

 einer 5procentigen Kochsalzlösung, 9 Theile Wasser). Diese Lösung hat 

 den großen Vortheil, dass sich die Eier i bis 2 Tage darin erhalten lassen, 

 ja sogar sich w^eiter entwickeln. Es war dies beim Ermitteln der Her- 

 kunft der einzelnen Furchungszellen von großem Nutzen. Die Eier sind 

 wenig durchsichtig, und war ich beim Verfolgen der ersten Entwick- 

 lungsvorgänge ganz auf die Hilfe der Reagentien angewiesen. Man 

 kann die Eier sehr schön präpariren , w^enn man sie zuerst mit abso- 

 lutem Alkohol behandelt, dann mit GRENACHER'schem Alaunkarmin färbt 

 und schließlich in Dammarlack einschließt. Sie erhalten sich so voll- 

 ständig hell, während bei Einschluss in Glycerin die Protolecithtropfen 

 wieder erscheinen und die Präparate undurchsichtig machen. 



Auch die Furchungsstadien und jüngeren Embryonen kann man 

 nur in präparirtem Zustande genau studiren. Die Behandlung war hier 

 eine verschiedene. Sie wurden entweder in ein Gemisch von 1 Theil 

 Chromsäure, 1 Theil Essigsäure auf 100 Theile Wasser, oder gleich in 

 absoluten Alkohol gebracht und dann mit Alaunkarmin gefärbt. Nach 

 der Behandlung mit Alkohol geht die Färbung sehr rasch und wird 

 ganz gut, wenn man nur recht verdünnten Karmin anwendet. Von an- 

 deren Tinktionsmitteln versuchte ich noch ammoniakalischen Karmin, 

 Pikrokarmin und Hämatoxylin; erhielt jedoch nur mit dem ersteren 

 manchmal gute Resultate. Die Wirkung ist nicht so sicher und die Fär- 

 bung nicht so distinkt wie bei Alaunkarmin. 



Eingeschlossen wurden die Embryonen durchweg in dicken Dam- 

 marlack. Das Deckgläschen wurde durch Glasfäden, die sich leicht in 



