Zur Physiologie der Turbellaiien 



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Der am meisten hervortretende Unterschied zwischen diesen beiden Zelltypen 

 ist, wie der Name angibt, der, dass die Amöboidzellen oft deutliche amöboide Be- 

 wegungen durch Aussenden von breiten hyalinen Pseudopodienfortsätzen (Textfig. 

 5 a) zeigen, aber keine Cilienbekleidung haben, während eine solche bei den 

 Flimmerzellen vorhanden ist, welcbe ihrerseits keine amöboide Bewegungsfähig- 

 keit besitzen. 



Ein anderer Unterschied ist der, dass die Flimmerzellen im Durchschnitt 

 kleiner als die Amöboidzellen sind und nicht so starke Grössevariationen je nacb dem 

 Nahrungszustand zeigen wie die letzteren. So variieren die Flimmerzellen bei 

 Microstomum lineare zwischen 19 — 22 \l, bei Stenostomum leucops zwischen 8 — 18 jj. 

 und bei Macrostomum tuba zwischen 19 — 29 [J. ; die Durchschnittvariation bei den 

 beiden letztgenannten Arten ist jedoch geringer (10 — 15 \i. für St. leucops laut Graff 

 1875). Zum Vergleich kann mitgeteilt werden, dass die Amöboidzellen bei Pro- 

 rhynchus stag i talis zwischen 18 — 45 jj. variieren (Durchschnittsgrösse ca. 25 ij.), bei 

 Mesostoma lingua zwischen 20,4 — 48,8 \>. (Durchschnittsgrösse ca. 30 ja). Der Nah- 

 rungszustand, in welchem die Zellen sich befinden, spiegelt sich viel deutlicher in der 

 Grösse der Amöboidzellen als in derjenigen der Flimmerzellen wieder; die Amöboid- 

 zellen bei Hungertieren sind immer bedeutend kleiner als bei wohlgenährten Tieren 

 (vergl. Textfig. 5 c,— c 3 ). Ähnliche Verhältnisse konnten wir früher betreffs der 

 Amöboidzellen bei den Tricladen konstatieren.. 



Wir gehen nunmehr zu einer näheren Untersuchung der beiden genannten 

 Zelltypen über. 



a. Die Amöboidzellen. 



Wenn man die Darmzellen in Wasser durch vorsichtigen Deckglasdruck isoliert, 

 so findet man oft in der Pressmasse, nebst ganzen isolierten Amöboidzellen, auch sol- 

 che, welche mehr oder weniger mit einander zusammenhängen (Textfig. 5 b). Dieses 

 beruht wie ersichtlich auf die Geneigtheit der amöboiden Zellen, mehr oder weniger 

 mit einander zu Syncylien zusammenzuschmelzen. In gewissen Fällen geht diese 

 Syncytiierung so weit, dass es einem kaum gelingt die Zellen isoliert zu bekommen, 

 sondern nur grössere oder kleinere Plasmamassen. Bei Dalyellia cuspidata habe ich 

 bei Pressung den ganzen Darm als eine einzige zusammenhängende Plasmamasse 

 isolieren können. Bei stärkerem Druck wurde die Plasmamasse ausgedrückt, bekam 

 aber, als der Druck aufhörte, wieder ihre vorige Form. Die Zellen zu isolieren gelang 

 nicht; wahrscheinlich war die Syncytiierung zu stark. Auch bei Gyratrix, Acro- 

 rhynchus u. a. kann man ähnliche Verhältnisse beobacbten. Beim Zerdrücken der 

 Tiere erhält man selten ganze Darmzellen, dagegen oft zusammenhängende plasma- 

 tische Massen oder Syncytien (vergl. Textfig. 7 d); hier und da kommen Einschnü- 

 rungen vor, die wahrscheinlich die Verschmelzungsgrenzen zwischen den einzelnen 

 Epithelzellen angeben. 



In gewöhnlichen Fällen kann man indessen die Darmzellen leicht bei Pressung 

 isolieren. Sie enthalten je nach dem Nahrungszustand eine wechselnde Anzahl Nab- 



