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Nach meinen Beobachtungen ist die Mittellamelle der Qiterkutis-Endodermzellen eine dünne, 
an den Zellkanten kleine massive Zwickel bildende Membranschicht (Tai'. [, Fig. 1, m.), welche am 
besten durch Behandlung der Membran mit Eau de Javelle und Kalilauge oder mit Schulze- Gemisch 
sichtbar zu machen ist. Die durch die genannten Reagentien isolierte Lamelle färbt sich nach dem 
Auswaschen mit Wasser mit Chlorzinkjod meist nur ganz schwach blau; bei den Zellen der mehr- 
schichtigen Enterkutis von Ananassa macrodontes färbt sie sich intensiv blau in ihren Randzonen, 
während ihre Mittelschicht fast farblos bleibt. An der unveränderten Membran färbt sich die 
Mittellamelle meist rot mit Phloroglucin-Salzsäure. Die Rötung erstreckt sich entweder auf die 
Mittellamellen aller Wände einer Zelle (Zellen der einschichtigen einheitlichen Interkutis von Pani- 
cum crus galli, Hydrosme Rivieri, Langzellen von Anthurium Andraeanum, Aspidistra elatior und 
Crinum amabile, Endodermzellen der gemischten Interkutis von Iris germanica), oder sie kommt nur 
an den Mittellamellen der Aussenwände und Radialwände zustande, (Endodermzellen der einschichtigen 
Interkutis von Helianthus annuus) oder sie tritt nur auf den Radialwänden auf (Endodermzellen 
der einschichtigen Interkutis von Galeopsis ochroleuca). Lei Iris germanica rötet sich an den 
aussenseitigen Zwickeln der Mittellamellen der Radialwände nur eine feine Randzone, während die 
mittlere Zwickelmasse ungefärbt bleibt. Die Mittellamellen röten sich nicht in allen Fällen mit 
Phloroglucin-Salzsäure, wie man nach der Darstellung van AVisselinghs (1886, S. 10) annehmen 
könnte. In manchen Fällen habe ich auf die Phloroglucin-Reaktion bei der Mittellamelle nicht 
besonders geachtet; öfters aber konnte ich bei angestrengter Beobachtung nicht entscheiden, welcher 
Lamelle der Membran die Rötung zukam. Sicher tritt eine solche nicht ein bei den Mittellamellen 
der mehrschichtigen Interkuten von Canna indica und Hedychium Gardnerianum. 
Oft ist die Mittellamelle auf allen Seiten der Zelle unlöslich in konz. Schwefelsäure, 
z. B. bei den Nebenwurzeln von Ananassa macrodontes, an den Basalzonen der Stützwurzeln 
von Zea Mais etc. In anderen Fällen bestehen die Mittellamellen wenigstens an den Tangential- 
wänden aus schwefeläurelöslichen Substanzen. Nach van Wisselingh (1886, S. 10) scheint dies 
häufig vorzukommen bei den Mittellamellen der inneren Tangentialwände von Kurzzellen-Interkuten, 
die direkt an Parenchymzellen mit Cellulosewänden angrenzen. Bei den Endodermzellen der mehr- 
schichtigen Interkuten von Canna indica und Hedychium Gardnerianum besteht die Mittellamelle 
streckenweise aus Stoffen, die in konz. Schwefelsäure leicht verquellen. Legt man Quer- 
schnitte der Interkuten der beiden Pthmzen in Schwefelsäure, so verquellen bei Canna die genau 
tangential stehenden Interkutiswände sofort gleichmässig zu einer in ihren Mittelpartien farblosen, 
an den tangentialen Rändern von einer gelblichen, stärker liehtbrechenden Lamelle begrenzten 
Schicht, während die Radialwände und einzelne schräg zum Radius des Wurzelquerschnitts stehende 
Wände zunächst homogen und nur infolge einer durch die Schwefelsäure verursachten starken 
Wellung der Wand auf dem Querschnitt etwas verbreitert erscheinen (Taf. II, Fig. 39). Nach 
längerer Einwirkung der konz. Schwefelsäure werden an den wenig gequollenen Radialwänden 
drei Lamellen sichtbar, eine mittlere, relativ dünne und zwei seitliche, stärker lichtbrechende, 
mit den gelblichen Randschichten der gequollenen Tangentialwände korrespondierende Lamellen. 
Bei Hedychium Gardnerianum erfolgt die Schwefelsäurequellung der Membran in der Weise, das- 
die tangentialen und viele schräg zum Radius stehenden Wände an mehreren, neben einander liegenden 
Stellen blasenförmig aufgetrieben werden (Taf. II, Fig. 37). Die Mittelpartien der gequollenen 
Stillen sind auch hier farblos, die Randschiehten bräunlich. Dit' Zwickel der Enterkutiszellen von 
Hedychium (Taf. II, Fig. 37 z.) werden durch die Schwefelsäure in ihrer ganzen Masse stark ge- 
