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Henierocallis Kwanso, Vanilla planifolia, Renanthera coccinea, Rodriguezia Barkeri. Nach Beseitigung 
der Suberinlamelle durch Kalilauge und Wasser und Färbung mit Jod und Schwefelsäure soll sich 
die Zwiseheiilainelle oft an der 1)1 au oder grünlich gefärbten Celluloselanielle als gelber oder brauner 
Saum bemerkbar machen. Die schon besprochene Tüpfelung erstreckt sich — soweit ich beobachten 
konnte — nur auf die Celluloselamelle, d. Ii. die Tüpfelkanäle reichen nur bis zur Suberinlamelle. 
In den jüngsten Stadien ihrer Entwicklung scheinen die Celluloselamellen oft aus reiner 
Cellulose zu bestehen. Bei Aspidistra elatior und Iris sibirica färben sich nach meinen Beobachtungen 
noch relativ dicke Lamellen (hei Aspidistra noch in einer Zone von 8 cm Spitzenabstand) rein 
blau mit Chlorzinkjod. Mit zunehmendem Alter verändern sich die Celluloselamellen stofflich; sie 
röten sich dann sehr oft mit Phloroglucin-Salzsäure, färben sich hellbraun mit Chlorzinkjod, nehmen 
al»er Sudanfärbung meist nicht an, so dass man die Lamellen in diesen Stadien als verholzt bezeichnen 
kann. Derartige verholzte Celluloselamellen finden sich bei Saccharum officinarum, Zea Mais, Trapa 
natans, Arundinaria japonica, Calla palustris, Panicum crus galli, Acorus Calamus, Asparagus 
Sprengen, Henierocallis fulva, Iris germanica. Aspidistra elatior u. a. Bei Arundinaria japonica und 
Phragmites communis quellen die verholzten Lamellen sehr stark in konz. Schwefelsäure, und bei 
Phragmites (Wasserwurzeln) erfolgt dabei schliesslich Lösung der Lamellen. Mitunter lässt sich an 
älteren Celluloselamellen eine deutliche Phlorogluein-Salzsäure-Rötung nicht erzielen, z.B. bei Phoenix 
daetylifera (junge Wurzeln der Keimpflanze) und Anthurium Andraeanum. Die Celluloselamellen 
bräunen sich bei diesen Pflanzen mit Chlorzinkjod und nehmen Sudanfärbung nicht an. 
Kutisierte Celluloselamellen kommen bei Ananassa macrodontes und wahrscheinlich (Schim- 
per, 1884, S. 326) noch bei vielen anderen Bromeliaceen vor. 
Wenden wir uns nun zur Betrachtung der Protoplasten der Interkutis-Endodermzellen. Die 
älteren Beobachter (Chatin 1856, S. 9, Oudemans, 1861, S. 25) hielten die Endodermzellen der 
Kurzzellen-Interkuten für plasmafreie Elemente. Leitgeb (1865, S. 200) gibt an, dass in den Lang- 
zellen ..nie körnerartige Gebilde" und nie ein Zellkern angetroffen werden. Weitere genauere Lite- 
raturangaben über die Protoplasten der Interkutis-Endodermzellen sind mir nicht bekannt. Olivier 
(1881, S. 58), Juel (1884, S. 5) erwähnen bei der Beschreibung der mehrschichtigen Interkuten die 
Protoplasten nicht. 
Nach meinen eigenen Beobachtungen lassen allgemein die Protoplasten der in den Inter- 
kuten liegenden Endodermzellen dünne wandständige C ytoplasmaschläuche , die meist eine grosse 
zentrale Zellsaftvakuole umschliessen, und den einer Wand anliegenden Zellkern erkennen. Letzterer 
ist bei den darauf untersuchten Pflanzen 5 fi (Phragmites) bis 10 fi (Hydrosme Rivieri) gross. Es 
ist oft schwierig die dünnen Plasmabeläge zu unterscheiden; es gelingt dies meist, wenn man an 
frischem Material Plasmolyse durch 10-proc. Kaliumnitratlösung herbeiführt. Auf das Vorkommen der 
Chromatophoren habe ich nicht geachtet; auffallend ist es, dass Stärkeeinschlüsse bei den bisher 
untersuchten Pflanzen sich in den Endodermzellen der Interkuten nie finden, auch nicht in den Fällen, 
wo das Rindenparenchym Stärke führt. Die zentrale Vakuole der Zellen enthält meist farblosen 
Zellsaft; nur bei Henierocallis fulva fand ich letzteren gelb gefärbt. 
In den in Rede stehenden Zellen liegen mitunter Sekrete, so z. B. aetherisches Ol bei 
Acorus Calamus, Acorus gramineus, Valeriana officinalis nach van Tieghem (1866, S. 175), Zacharias 
(1879, S. 621) und A. Meyer (1891, S. 218), Gerbstoffe bei Palmenwurzeln z. B. bei Interkuten 
von Chamaerops humilis, Caryota sobolifera , Dictyospernia aureum, Kentia exorrhiza, Archanto- 
phoenix Alexandrae, Rhopalostylis Baueri, Euterpe edulis, Hewea Belmoreana nach Micheels (1889, 
