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gt'bontlen Mediums anpassen. So hat er beohaclitet. daß »Süßwasserformen , die durch Flußstrinnungen 
ins I\Ieer getriel)en worden waren, trotz der eingetretenen Plasmol^'se am Leben bliel)en. Weit empfind- 
licher als gegen Medien höherer Konzentration ist der Protopla.st nach Karsten (1. c.) gegen solche 
niederer Konzenti'ation. Bei Zusatz solcher tritt nach seinen Angaben fast immer eine Portion Plasma 
aus. und die Zelle stirbt sofort ab. 
Der Protoplast scheint mir nicht liesonders zähflüssig, sondern relativ dünnflüssig, etwa wie 
gewöhnlicher Grummischleim , zu sein. Wird durch starken Druck des Deckglases die Zellmembran 
gesprengt, so fließt der gesamte Protoplast auch durch dünne Brnchspalten der Membran in raschem 
Strom in das umgebende Wasser aus. Für meine Annahme spricht auch die relativ große Geschwin- 
dio-keit der Plasmaströmungen und das rasche Durcheinanderwirbeln von Volutinkiirnchen, das man 
l)ei verschiedenen Arten in den endständigen Plasmaanhäufungen beobachten kann. 
Zum Fixieren des Protoplasten halte ich mit Erfolg 1 "/o Uberosmiumsäure, verdünnte Fle- 
ming'sche Lösung, konzentrierte wässerige Sublimatlösung, Picrinschwefelsäure , Picrinsäure-Nigrosin 
(Pfitzer 1888, S. 44) angewandt. Osmiumsäure fixiert den Protoplasten, wie schon Pfitzer (1871, 
S. 29) und Lauterborn (1890, S. 7) hervorheben, fast unverändert. Sie ist 1)esonders für Präparate 
zu empfehlen, die ungefärbt studiert werden sollen. Fleming' sehe Lösung, Sublimat und Picrin- 
schwefelsäure sind dann am Platze, wenn die Zellen gefärbt und in Balsam eingeschlossen werden 
sollen. Der Färbung muß aber dann noch ein Härten mit Alkohol vorausgehen. Doch ergibt Picrin- 
schwefelsäure keine so guten Resultate wie die beiden andern. Jodjodkalium c (A. Meyer, Bakterien- 
practicum 1903, S. 152) fixiert gut, färbt aber zu stark braun und kann deshalb nur in beschränktem 
Maße verwandt werden. Picrinsäure-Nigrosin fixiert und fär])t recht gut, das Reagens ist aber zum 
Studium feinerer Strukturverhältnisse des Protoplasten nicht zu empfehlen. Alkohol ist zum Fixieren 
nicht zu gebrauchen, aber bei der nachträglichen Härtung nicht zu entbehren. Chloralhydrat macht 
den Zellinhalt durchsichtig. Er verquillt und treil)t die Schalen auseinander. Die Struktur des Proto- 
plasten verschwindet dabei vollkommen. 
II. Die ergastischen Gebilde. 
a) Einschlüsse des Protoplasten. 
V. Kapitel. Die Doppelplatten. 
Von den Einschlüssen des Protoplasten nenne ich zuerst diejenigen, die bereits von Pfitzer 
(1871, S. 30/31) in der Plasmabrücke von Pinnularia viridis als paarweise parallele dunkle Linien be- 
obachtet und als solide Zylinder dichteren Plasmas gedeutet worden sind. Diese Gebilde sind von 
Lauter born (1896, S. 22) weiter untersucht und von ihm als „Doppelstä beben' bezeichnet worden. 
Auch Lauterborn (1. c. S. 22) hält sie für Plasmafäden; er hat sie außer bei Pinnularia auch bei 
Surirella beobachtet. Hier treten sie nach seinen Angaben (1. c. S. 23) vor der Teilung des Zellkerns, 
bei Beginn von dessen Wanderung, auf und verschwinden nach beendigter Teilung wieder. Karsten 
(1900, S. 259) hat Doppelstäbchen bei der Auxosporenl)ildung von Surirella saxonica Auersw. gefunden, 
.sie verschwanden hier aber schon vor Beginn der eigentlichen Teilung. Er spricht die Vermutung 
aus, daß dieselben eine besondere K(»rm des Kinoplasma Str aßbur ger's seien und zur Entwicklung 
der Strahlung veri)raucht würden. Ich habe die fraglichen Gebilde in der IMasmabrücke ruhender 
