18 TECHNIQUE ET MÉTHODE DE TRAVAIL 
Après une à trois minutes la coloration est terminée, on lave 
à l'eau, puis à l'alcool faible, et, après déshydratation on monte 
au baume. 
On obtient ainsi de très bonnes préparations, bien différen- 
ciées : les noyaux en noir, les cellules épithéliales en rose, le 
tissu conjonctif en jaune. 
V. Observation des pièces fraîches et des Nématodes 
libres. — Pour l'examen des parasites frais, attachés ou non 
à la muqueuse, je me suis servi de la loupe binoculaire Zeiss 
qui m'a rendu les plus grands services. Elle permet d'observer 
aisément les mouvements des Nématodes vivants, et, grâce à 
elle, j'ai pu voir les mouvements des pièces buccales de YHete- 
rakis vesicularis observé vivant. 
Pour les parasites à fixation faible ou nulle, Y Heterakis 
vesicularis ou le Belascaris canis, j'ai pu, également, sur des 
pièces fraîches voir l'extrémité antérieure de ces êtres plus ou 
moins engagée dans les glandes intestinales, alors que les 
méthodes histologiques sont impuissantes à le montrer. 
VI. Méthode physiologique. — En dehors de la méthode 
histologique et de l'observation directe, j'ai eu recours aussi 
à l'expérimentation. C'est de cette méthode que procèdent en 
particulier mes recherches sur les hémolysines de quelques 
Nématodes hématophages, comme aussi celles sur le mode de 
nutrition du Belascaris canis. 
Mais, s'il y a une technique histologique générale, il n'y a 
rien de semblable en physiologie et en biologie ; en dehors des 
lignes générales, l'expérimentation doit s'adapter à chaque cas 
particulier. 
Aussi trouvera-t-on les différentes techniques suivies au 
cours de mes expériences, à propos de chacune d'elles, et non 
point ici dans cet exposé général. 
