18 
TECHNIQUE ET MÉTHODE DE TKAYAIL 
Après une à trois minutes la coloration est terminée, on lave 
à l’eau, puis à l’alcool faible, et, après déshydratation on monte 
au baume. 
On obtient ainsi de très bonnes préparations, bien différen- 
ciées : les noyaux en noir, les cellules épithéliales en rose, le 
tissu conjonctif en jaune. 
Y. Observation des pièces fraîches et des Nématodes 
libres. — Pour l’examen des parasites frais, attachés ou non 
à la muqueuse, je me suis servi de la loupe binoculaire Zeiss 
qui m’a rendu les plus grands services. Elle permet d’observer 
aisément les mouvements des Nématodes vivants, et, grâce à 
elle, j’ai pu voir les mouvements des pièces buccales de Y Iiete- 
rakis vesicularis observé vivant. 
Pour les parasites à fixation faible ou nulle, Y Heterakis 
vesicularis ou le Belascaris canis , j'ai pu, également, sur des 
pièces fraîches voir l'extrémité antérieure de ces êtres plus ou 
moins engagée dans les glandes intestinales, alors que les 
méthodes histologiques sont impuissantes à le montrer. 
VI. Méthode physiologique. — En dehors de la méthode 
histologique et de l'observation directe, j’ai eu recours aussi 
à l'expérimentation. C’est de cette méthode que procèdent en 
particulier mes recherches sur les hémolysines de quelques 
Nématodes hématophages, comme aussi celles sur le mode de 
nutrition du Belascaris canis. 
Mais, s’il y a une technique histologique générale, il n’y a 
rien de semblable en physiologie et en biologie ; en dehors des 
lignes générales, l'expérimentation doit s’adapter à chaque cas 
particulier. 
Aussi trouvera- L-on les différentes techniques suivies au 
cours de mes expériences, à propos de chacune d’elles, et non 
point ici dans cet exposé général. 
