Zur Untersuchungstechnik der Hyphomyceten 
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hatte, die Pilzverzweigungen innerhalb des Agars 
so intensiv und elektiv zu färben, dass gute Photo- 
grainme der Schnitte resultirten. 
Der erste Schritt auf diesem Wege war die Auffindung von 
Methoden , den mit basischen Anilinfarbstoffen tingirten Agar über- 
haupt wieder zu entfärben. Hierbei kam es mir zu statten, dass 
ich in einer anderen grösseren Versuchsreihe 1 ) durch Einbettung 
der dort untersuchten Comedonen in Agar schon implicite Vor- 
bilder für die Agarentfärbung zugleich geschaffen hatte. Eine Durch- 
sicht jener Comedonenpräparate in Bezug auf die Agarentfärbung 
ergab denn auch bereits eine Reihe von Entfärbungsmethoden, welche 
ich hier nur in einer Fussnote 2 ) mit anführen will, da sie möglicher- 
weise für andere Forschungen in der angegebenen Richtung von 
Werth sein könnten. Von mir sind dieselben zu Gunsten der gleich 
näher zu besprechenden Methode aufgegeben worden. 
Dieselben erwiesen sich nämlich für das einfache Studium der 
im Agar eingebetteten Pilztheile nach Vorfärbung mittelst alka- 
lischen Methylenblaus oder Karbolfuchsins bereits geeignet, nicht 
aber für die Photographie, da diese den Stärkstmöglichen Kontrast 
zwischen absolut farblosem Agar und dunkelroth, resp. dunkelblau 
gefärbtem Pilz verlangt. Ich suchte sie also zu verbessern und be- 
gann begreiflicherweise damit, den Einfluss der Essigsäure für sich 
zu studiren , weil diese schon in drei der genannten Methoden eine 
Rolle spielt. In der That erreichte ich mit der Essigsäure allein, 
ohne Zuhülfenahme anderer Entfärbungsmittel, bereits sehr gute 
Resultate, wenn ich dieselbe vor der Färbung auf die 
Schnitte einwirken liess und die nachträgliche Entfärbung 
in Anilinöl vornahm. Anilinöl entfärbt auch sonst aus allen stark 
wasserhaltigen Geweben die Farbe viel rascher und besser, als aus 
relativ trockenen 3 ). 
Indem ich annahm, dass die Vorbehandlung des Schnittes mit 
Essigsäure den Agar stärker zur Quellung und Wasserauf nähme 
brachte, als die Pilzfäden 4 ), suchte ich, alle möglichen Konzentra- 
tionen der Essigsäure durchprobirend , diese Imbibitionsdiflerenz 
möglichst zu steigern. 
Die Konzentrationen von IO^Iq — ö °| 0 schienen am geeignetsten 
zu sein, und es erwies sich als ziemlich irrelevant, ob die Säure eine 
1) Die Färbung der Mikroorganismen im Horngewebe. (Mon. f. prakt. Dermat. 
Bd. XIII 1891. pg. 225.) 
2) Successive Behandlung der mit alkalischem Methylenblau gefärbten Agarschnitte 
mit: 1) 1% Resorcinspiritus , Essigsäure. 2) 1 O/o Hydrochinonspiritus , Essigsäure. 
3) 1 0/ 0 Brenzkatechinspiritus, Essigsäure. 4) Glyzerinäther, resp. Glyzerinäthermiscbung 
(s. a. o. a. O.) 6) Kochsalzlösung, Wasserstoffsuperoxyd, Alkohol. 6) Oxals. Ammo- 
niaklösung, Alkohol, Glykol. 7) Sublimat, Jodalkohol, Glyzerinäther 8) Pikrinsäure 
(konz. wässr.), Alkohol, Anilin. 
3) Hierauf scheint mir die Weigert’sche Darstellung der Pilze, des Keratins 
und Fibrins mittelst Anilinöls grösstentheils zu beruhen. 
4) Bei allen diesen Versuchen bediente ich mich der Kulturen meines Favus griseus 
auf Pepton-Levulose-Agar Dieses Objekt ist deshalb besonders geeignet, weil man 
auf jedem Schnitte neben einander : Lufthypben, Luftsporen und Bodenhyphen vor sich 
hat. Der gestreckte Verlauf der letzteren lässt einen etwaigen schädlichen Einfliiss der 
Reagentien besonders leicht erkennen. 
