SPIROCHÈTES ET SPIRILLES 
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parmi les granules de volutine et de graisse. Ces bandes ne 
sont pas si réfringentes que les granules. Souvent on observe 
qu’elles sont liées entre elles, de sorte qu’il se forme un fila- 
ment continu en zigzag ou en spirale. Sans doute il faut homo- 
loguer ce fil à celui que j’ai pu démontrer dans Bacillas maxi- 
mas baccalis (22). On verra que les études cytologiques plus 
détaillées confirment cette manière de voir. 
Les mouvements de Sp. giganteum sont très compliqués. Ellis 
les a observés minutieusement. En examinant des cellules en 
mouvement, je fus frappé de l’indépendance du mouvement 
ondulant, de celui qui fait changer de place la cellule. Souvent 
on pouvait observer des cellules en vives ondulations, qui cepen- 
dant ne se déplaçaient que très lentement ou même ne chan- 
geaient pas de place. Un autre mouvement très remarquable, 
que je n’ai pas trouvé signalé, est le suivant : Une cellule immo- 
bile décrit soudain un demi-cercle autour de l’axe longitudinal; 
c’est comme le commencement d’un mouvement ondulant, subi- 
tement arrêté. Après un court repos, la cellule répète ce mou- 
vement convulsif, sans qu’on puisse déceler la moindre con- 
traction protoplasmique à l’intérieur de la cellule. 
Technique pour la coloration et la fixation. — Pour la fixa- 
tion des cellules, j’ai employé le formol à 40 0/0 qui donne 
d’excellents résultats, les contractions du protoplasme étant 
extrêmement rares. Pour la coloration, je me suis servi en pre- 
mier lieu de l’hématoxyline ferrique d’Heidenhain, qui m’a 
donné ici, comme chez Bac. maximus baccalis, d’excellents résul- 
tats. En dehors de cette méthode, j’ai fait usage, avec beaucoup 
de succès, de la méthode de Romanowsky-Nocht modifiée par 
Giemsa (solution d’azur II à 0,8 0/0 : I partie; solution d’éosine 
à 0,01 0/0 : 5 parties. Colorer pendant la nuit, laver, sécher, 
monter) que Perrin recommande pour la coloration de Sp. bal- 
bianii et qui donne des résultats beaucoup plus satisfaisants que 
la vieille méthode de Romanowsky, employée jusqu’alors dans 
la technique bactériologique. 
Structure du protoplasme. — La meilleure manière de mettre 
en évidence la structure protoplasmique, c’est la coloration 
momentanée dans une solution diluée de bleu de méthylène. 
Dans des préparations colorées de cette manière, on voit que le 
protoplasme est constitué d’alvéoles plus ou moins grandes 
