Zur Morphologie des Glykogens bei Trematoden und Cestoden. 
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So sollte es also Zweck dieser Arbeit sein, ein genaueres Bild der 
Glykogenlagerung bei Trematoden und Cestoden zu gewinnen, um daraus 
eventuell Rückschlüsse auf den Verlauf des Kohlehydratstoffwechsels 
dieser Parasiten ziehen zu können. 
Allen, die meiner Arbeit Interesse und Hilfe zuteil werden ließen, 
möchte ich hier meinen Dank abstatten. Vor allem schulde ich den- 
selben meinem hochverehrten Lehrer Herrn Geheimrat Hertwig und 
ganz besonders auch Herrn Professor Goldschmidt, der die Anregung zu 
dieser Untersuchung gegeben hat. 
II. Material und Methoden. 
Da Materialbeschaffung und mikrotechnische Methoden bei beiden 
Gruppen ziemlich die gleichen waren, so mögen sie gemeinsam für beide 
hier erörtert werden. Von Trematoden wurden folgende Formen unter- 
sucht: Fasciola hepatica und Dicrocoelium lanceahm aus der Schafleber, 
Distomum cylindraceum aus der Lunge von Roma temporaria, Distomum 
cygnoides und Polystomum integerrimum aus der Harnblase von Rana 
esculenta und Lecithochirium rufoviride aus dem Magen von Conger conger. 
Von Cestoden dienten als Material: Anoplocephala plicata , Anoplocephala 
perfoliata und Anoplocephala mamillana aus dem Pferdedarm, Callio- 
bothrium coronatum aus dem Spiraldarm von Scyllium stellare und Caryo- 
phyllaeus mutabilis aus dem Darm von Cyprinus carpio. Sämtliche Para- 
siten wurden lebend den betreffenden Eingeweideteilen entnommen und 
sofort fixiert. Als Fixationsmittel wurde ausschließlich CARNOYSche 
Flüssigkeit verwendet, die, wie schon v. Kemnitz angibt, sehr gute Bilder 
liefert. Die Einbettung in Paraffin erwies sich auch als durchaus einwand- 
frei. Da beim Aufkleben der Schnitte immer noch am ehesten Gefahr vor- 
handen ist, daß Glykogen in Lösung geht, da auch beim Aufkleben mit 
Alkohol während des Erwärmens die Konzentration nicht kontrolliert 
werden kann, so habe ich es vorgezogen, trocken mit Eiweißglyzerin auf- 
zukleben. Die Schnitte wurden auf dem ganz dünn mit Eiweißglyzerin 
bestrichenen Objektträger mit einem breiten Pinsel aufgedrückt, dadurch 
sind sie ganz gestreckt und bei einiger Vorsicht wird das Gewebe nicht 
geschädigt. Der Objektträger muß dann noch leicht erwärmt werden, 
damit das Eiweiß koaguliert und die Schnitte festkleben. Die Methode 
hat natürlich den einen Nachteil, daß sie mehr Zeit erfordert als die Streck- 
methode in warmem Wasser, da bei größeren Objekten die Schnitte einzeln 
aufgeklebt werden müssen. Es ist dies aber hiebei kein Zeitverlust, weil 
sowieso meistens zwei Objektträger abwechselnd mit je einem Schnitt 
