ACTINOBVCIELOSE, ACTINOMYCOSE, BOTRYOMYCOSE 507 
b) Laisser agir de 1 /4 d'heure à une demi-heure la solution 
suivante : 
Violet Hoffmann A 2 grammes. 
Alcool à 90° 25 c. c. 
Eau anilinée . 75 c. c. 
Laver ensuite rapidement. 
c) Décolorer avec l'alcool chlorhydrique très rapidement ; puis 
avec l'alcool picriqué faible : 
Acide picriqué . . 0 gr. 02 
Alcool absolu . ... 50 c. c. 
Ce dernier a pour but en même temps de décolorer la prépara- 
tion et de colorer légèrement le fond en jaune; pour finir, passer 
quelques gouttes d'alcool absolu; xylène, baume ou résine. 
Les crosses d'actinobacillose ou d'actinomycose sont rouge 
vif, les noyaux en violet noir, le protoplasma en jaune clair. 
De même qu'avec la phénosafranine on pourrait colorer 
d'abord au violet Hoffmann puis au carmin d'indigo. 
Il est également possible de décolorer à l'alcool chlorhydrique 
puis l'alcool-xylène comme dans la méthode précédente. 
4° Méthode a l'éosine ou a la méth yléosine. 
a) Colorer le fond à l'hématéine ou au Kernschwartz ; laver. 
b) Colorer une demi-heure avec une solution aqueuse saturée 
d'éosine à l'eau ou de méthyléosine, laver. 
c) Décolorer, comme dans la méthode précédente au violet 
Hoffmann, avec l'alcool chlorhydrique et l’alcool picriqué ou 
l'alcool-xylène. 
Les préparations obtenues sont également très satisfaisantes; 
l'éosine montre bien les actinobacilles ou les filaments intra-cellu- 
laires. 
5° Méthode a la fuchsine acide. 
Cette méthode a été indiquée par MM. Lignières et Spitz; 
nous lui préférons les précédentes, mais il peut être utile d'y 
recourir par comparaison; la fuchsine acide, en effet, se 
fixe assez énergiquement sur les filaments les plus ténus ou les 
actinobacilles inclus dans les cellules. Nous avons obtenu de bons 
résultats en procédant de la manière suivante : 
a) Coloration des noyaux à l’hématéine ou à l'hématoxyline 
et lavage. 
b) Coloration de l'ensemble avec une solution de fuchsine 
