RECHERCHES BIOLOGIQUES SUR L'ÉOSINOPHILE 
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animaux, on rencontre fréquemment une grande abondance 
d’éosinophiles (de 20 à 60 p. 100) à noyau, en général, bilobé 
ou segmenté, quelquefois mononucléés ou à noyau incisé, 
associés à des cellules lymphoïdes (monocytes, lymphoïdocytes) 
à l'exclusion le plus souvent de toute autre forme de leucocytes 
granuleux. 
On prélève quelques gouttes d exsudât, en ponctionnant 
aseptiquement le péritoine d'un cobaye avec une pipette effilée. 
On mélange dans un verre stérile 3 gouttes d exsudat et une 
goutte d’une* émulsion préparée en diluant dans de l’eau phy- 
siologique stérilisée les corps phagocytables (poussières, 
microbes, cellules végétales et animales, etc...); on reprend le 
mélange dans une pipette capillaire que l’on ferme à la veil- 
leuse d’un bec de Bunsen, et que l’on porte dans une étuve 
réglée à 38-39 degrés. Après une heure, on fait des frottis que 
l’on colore par la méthode de Pappenheim, avec les modifications 
que nous avons déjà indiquées dans notre précédent mémoire. 
Les éosinophiles englobent les poussières inertes (noir 
animal finement pulvérisé). Ces poussières sont tantôt com- 
prises entre les granulations (pl. VI, fig. I), tantôt renfermées 
dans des vacuoles (pl. VI, fig. 2). 
La planche VI montre très nettement que tous les microbes 
que nous avons utilisés dans nos expériences : staphylocoque 
(fig. 3, 4 et 5), sarcine jaune (fig. 6), streptocoque (fig. 7), 
gonocoque (fig. 8 et 9), méningocoque (fig. 10 et 11), B. subtilis, 
B. anthracis (fig. 12), B. coli, IL typhique (fig. 13 et 14), 
B. diphtérique (fig. 15 et 16), B. tuberculeux (fig. 17, 18, 19, 20), 
Spirochæta gallinarum (fig. 25 et 26) sont phagocytés par les 
éosinophiles, aussi bien mononucléaires que polynucléaires; 
c’est-à-dire aussi bien par les éosinophiles de l’exsudât périto- 
néal venus du sang que par les éosinophiles mononucléaires 
d’origine locale. 
Les meilleurs résultats ont été obtenus avec le staphylo- 
coque, la sarcine, le gonocoque, le B. typhique, le B. coli et le 
B. tuberculeux (1). 
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(1) Pour colorer les cellules contenant le B. tuberculeux nous avons uti- 
lisé la technique suivante : Les frottis de cellules, rapidement desséchés par 
agitation, sont fixés par l’alcool méthylique (10 minutes). On colore les 
microbes par le Ziehl à chaud; on fait agir le chlorhydrate d'aniline, on déco- 
lore par l’alcool absolu, on lave à l’eau distillée. Les granulations des 
