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ANNALES DE L’INSTITUT PASTEUR 
son caractère d’anaérobie facultatif, profite, pour envahir les 
tissus sains, des blessures confuses à cicatrisation lente. 
J’ai voulu vérifier tout d’abord si ces phénomènes étaient 
spéciaux au M. stolonifer et a la batate. Voici les deux séries 
d'expériences que j’ai réalisées (1). 
a) Parasitisme du M. stolonifer vis-à-vis d'autres Phanérogames. 
Bien qu’il semble que clans les conditions naturelles la batate seule ait à 
souffrir du Mucor, j’ai ensemencé la mucédinée dans le vide, sur des ron- 
delles de pomme de terre, de carotte, de navet et de betterave, avec un 
même nombre de gouttes d’une émulsion de spores provenant d’une culture 
sur batate stérilisée. Alors que les témoins exposés à l’air cicatrisaient nor- 
malement, les trois premières espèces étaient attaquées jusqu’à 1 centimètre 
de la surface dès le second jour (à l’étuve à 30 degrés), quoique d’une façon 
moins complète que les bâtâtes inoculées en même temps : les parenchymes 
étaient dissociés, sans odeur putride et montraient au microscope le mycé - 
lium caractéristique ; la rondelle de betterave restait intacte. Les résultats 
furent les mêmes chaque fois qu’on répéta l’expérience: une seule fois, la 
betterave ayant glissé contre un fragment de batate énergiquement parasité, 
a présenté une faible épaisseur de tissus dissociés. Des expériences ulté- 
rieures montreront que le même champignon peut attaquer aussi les topi- 
nambours et les feuilles charnues de Agave americana. 
b) Faculté parasitaire d'autres microorganismes pour la batate. 
Bien que, comme je l'ai dit, j’aie toujours observé, sur des 
centaines de racines naturellement attaquées, le seul M. stolo- 
nifer , j’ai reproduit les expériences ci-dessus d’abord avec 
d’autres espèces du genre Mucor ensemencées dans le vide, 
il/, mucedo attaqua fort bien la batate, quoique moins énergi- 
quement que M. stolonifer , et aussi, du reste, la pomme de 
terre, la carotte et le navet; il respecta la betterave. J'ai obtenu 
(1) Voici la technique à laquelle, après quelques tâtonnements, je me suis 
arrêté : la stérilisation extérieure des organes charnus se faisait par l'eau 
oxygénée à 10 p. 100 de la solution commerciale (bain d’une heure); on 
lavait ensuite par trempage dans l’eau stérile. Qu’il se soit agi de cultures 
aérobies ou anaérobies, chaque rondelle d’organes charnus était placée dans 
un verre de montre ou un petit cristallisoir de manière à l’isoler autant que 
possible (je n’employais de boîte de Pétri fermée que dans des cas excep- 
tionnels, ce procédé étant trop peu pratique lorsqu’il s’agit d’un grand nombre 
d’essais). Pour les cultures à l’air, les rondelles, dans leur cristallisoir, 
étaient rangées dans des cuvettes de porcelaine (24 X 18) dont le fond était 
occupé par un papier-filtre mouillé et qu’on recouvrait d’un verre à vitre. 
Tout ce matériel était stérilisé. Les ensemencements se faisaient toujours au 
moyen de quelques gouttes d’une émulsion dans l’eau de spores ou de bac- 
téries, distribuées avec une pipette sur la surface des rondelles. 
