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ANNALES DE L’INSTITUT PASTEUR 
on n’observe pas de pigment ou seulement, à la lougue, une 
coloration jaunâtre. Après trois mois à la température du labo- 
ratoire, la matière colorante verte vire à l’orangé, puis devient 
peu à peu franchement rouge. Après plus d’un an cette teinte 
rouge se maintient. Les acides font disparaître la pigmentation 
verte qui est au contraire intensifiée par l'action des alcalis. 
II 
Milieu de culture. 
Dans un but de simplification facile à comprendre, la seule 
matière fermentescible mise à la disposition du microbe a été 
l’asparagine. 
Le milieu avait la composition suivante : 
Chlorure de sodium 5 gr. 
Phosphate disodique cristallisé 1 gr. 
Phosphate bipotassique cristallisé 1 gr. 
Asparagine pure (1) 3 gr. 
Eau distillée q. s. pour 900 c.c. 
le liquide, réparti par 450 cent, cubes dans des ballons de 1 litre 
bouchés à l'ouate, fut stérilisé 15 minutes à 110-112°. Pour 
l’analyse on le transvasait dans une fiole jaugée de 500 cent, 
cubes et on faisait le plein avec les eaux de lavage. 
Il est classiquement admis que l’asparagine n'est qu’assez 
lentement décomposée par l’eau (2). Récemment F. Ehrlich et 
Lange (3) ont confirmé ces données, l’hydrolyse serait propor- 
tionnelle au temps et l’azote amidé seul touché. 
Néanmoins, comme les conditions expérimentales peuvent 
faire varier dans de larges proportions le coefficient d’hydro- 
(1) L’asparagine employée a donné à l’analyse les résultats suivants : 
(a) 1 gr. 0321 ont perdu à 105* 0 gr. 1253. La substance renfermait donc 
12, 14 p. 100 d’humidité. Calculé pour asparagine : 12 p. 100; 
b) 0 gr. 7478 d’asparagine anhydre, traitée au Kjeldahi, a fourni une quan- 
N 
tité d’ammoniaque qui a saturé 11 c. c.45 de SOUP de titre — X 0,9765, d’où 
20,93 p. 100 d’azote au lieu de 21.21 p. 100 calculés. 
L’asparagine employée doit donc être considérée comme pure. 
(2) Dict. de Wurtz, 2 e suppl., I, 379. 
(3) F. Ehrlich et Lange. — Biochem. Zeits ., 1913; LIV, 256-276. 
