JOURNAL DE MICROGRAPHIE 
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ramolli le tissu connectif pour qu’on puisse l’enlever sans trop de 
grattage sur le spécimen. Quand les libres peuvent être séparées faci¬ 
lement, l'action est suffisante. Le temps varie suivant la température. 
A la température ordinaire d'une chambre habitée, il suffit d’un à 
trois jours, pour presque tous les muscles. Si le tissu connectif est 
très dense, il faut plus de temps. En employant la chaleur l’action 
peut être complétée en quelques minutes, mais le résultat n’est pas 
aussi satisfaisant parce que les couches superficielles sont, trop atta-* 
quées pendant que les couches intérieures ne le sont pas assez. 
o. Quand l’action est suffisante, on transporte le muscle dans 
beau pour enlever l’acide. Il est bon de changer l’eau plusieurs fois. 
6. Si l’on désire étudier les fibres quant à leur forme, leur lon¬ 
gueur, leurs rapports, on doit les manipuler aussi peu que possible. 
On choisit un faisceau qui se sépare aisément avec une grosse aiguille; 
on le transporte sur une lame de verre avec une goutte d’eau, ou si 
l’on veut la couleur jaune, une goûte de glycérine teinte avec l'acide 
picrique. Les fibres sont alors dissociées avec soin avec de grosses 
aiguilles sous le microscope à dissection. L’excès de glycérine est 
enlevé avec un papier buvard et une goutte de glycérine gélatinée 
chaude est ajoutée de manière à s’étaler lentement sur la préparation. 
Les fibres sont disposées avec les aiguilles et le slide est mis à refroi¬ 
dir jusqu a ce que la glycérine ait pris une consistance glutineuse. On 
recouvre alors la préparation avec une lamelle chaude. La gelée de 
glycérine en partie figée empêche les fibres de s’embrouiller quand on 
ajoute le cover (9). 
7. S’il s’agit d’étudier particulièrement les noyaux, le muscle est 
maintenu dans l’eau jusqu'à ce que l’acide soit enlevé. Il est alors 
coloré par le liquide de Koch pour les tubercules étendu de quatre ou 
cinq parties d’eau, pendant douze heures ou davantage. Un faisceau 
est placé de là sur une lame de verre dans de l’alcool à 20 pour 100 
contenant assez d’acide picrique pour prendre une couleur jaune 
citron. Celui-ci est graduellement remplacé pai* des alcools à 50, puis 
à 95 pour 100. Dans ce dernier, on dissocie les fibres comme il est dit 
ci-dessus, et après qu’on a drainé l’alcool on ajoute le collodion à 
l’essence de girofle et l’on dispose finalement les fibres. Aussitôt 
qu’une évaporation suffisante s’est produite pour fixer les fibres, une 
lamelle chauffée avec du baume, du Baume du Canada est déposé sur 
le spécimen. Si l’on a réussi, les noyaux sont colorés en rouge bril¬ 
lant et le corps de la fibre en jaune. Les stries transversales sont 
toujours très nettes et clairement définies après la coloration à l’acide 
picrique (9). 
8. Si l’on ne veut pas étudier le spécimen tout de suite ou s’il est 
gros, comme un œsophage, et qu’il doive être examiné pendant très 
longtemps, l’action de l’acide peut être arrêtée en transférant la pièce 
