114 
JOURNAL DE MICROGRAPHIE 
rendues aussi distinctes qu’on peut le désirer par l’emploi des réactifs colorants 
communément en usage. 
En essayant d’appliquer la méthode d’inclusion aux objets végétaux, j’ai 
suivi celles à l’aide desquelles les zoologistes font leurs préparations et je ne 
puis pas dire que j’aie découvert grand’chose d’essentiellement nouveau. Ce-, 
pendant, il faut encore prendre certaines précautions. Ici comme partout 
ailleurs dans les recherches microscopiques, il est difficile sinon impossible 
de donner des règles générales qui puissent être également utiles pour le trai¬ 
tement de tous les objets. Au contraire, on trouvera, dans la plupart des cas, 
qu’il faut traiter les différents objets d’une manière légèrement différente, et 
ce sera au tact de l’observateur qu’il appartiendra de trouver dans chaque cas 
la voie à suivre. 
Aussi, il semble très rationnel, au beu de donner des indications générales, 
par conséquent partiellement inexactes, de décrire chaque exemple d’une ma¬ 
nière complète. A quiconque voudrait se familiariser avec la méthode d’inclu¬ 
sion, je conseille de faire exactement ce que je vais décrire ici, et il réussira 
aisément à obtenir les mêmes résultats. Il pourra ensuite appliquer cette mé¬ 
thode à d’autres objets qui, peut-être, doivent être traités un peu différemment. 
Je vais décrire la méthode d’inclusion telle qu’on l’emploie pour préparer 
les points végétatifs des racines, car ce sont des objets très convenables et sur 
lesquels j’ai essayé les procédés les plus variés. Les racines primaires des 
graines en germination de Vida faba^ ou les racines secondaires des bulbes 
^Alliam cepa (poussant dans l’eau) devraient être employées dans ce but, 
car on y trouvera certainement de grandes et belles figures karyokinétiques. 
Dans les racines de Phaseolus multifloriis^ Zea Æsciilus Hippo- 
castanum^ au contraire, ces figures sont petites et peu distinctes 
Des extrémités fraiches de racines, longues de 1 ou 2 centimètres, sont pla¬ 
cées dans une quantité suffisante d’un réactif destiné à fixer le protoplasma 
vivant dans sa forme originale. 
Plusieurs substances peuvent être employées dans ce but. J’ai obtenu de 
très bons résultats avec une solution aqueuse d’acide chrômique à 1 0/0, avec 
une solution saturée d’acide picrique, etc., mais l’alcool absolu ne doit pas être 
employé parce que non seulement les racines se ratatinent complètement dans 
ce liifuide, mais, de plus, parce que comme je l’ai déjà rappelé, il est souvent 
difficile dentaire pénétrer la paraffine dans les objets ainsi traités. Les plus 
beaux spécimens ont été obtenus, toutefois, avec des racines qui avaient été 
immergées pendant quelque temps dans le mélange de Flemmiiig un peu mo¬ 
difié. Je suppose qu’on emploie un liquide ainsi composé : une solution 
aqueuse contenant ; 
Acide chrômique 
1 00 
0 02 
0 10 
Acide osmique 
Acide acétique 
Eau distillée . 
100 00 
Des liqueurs contenant davantage d’acide osmique seront préférées particu- 
