JOURNAL DE MICROGRAPHIE 
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culiérement si les spécimens ont été faits pour essayer lamélliode d’inclusion. 
Dans le cas où l’on n’a qu’une seule racine on peut obtenir plusieurs slides et 
il est ainsi facile d’essayer les effets de divers réactifs colorants. 
Si l’on ne veut faire que l’examen général de la structure interne du point 
végétatif, je recommande d’employer le carmin aluné, dans lequel les slides' 
doivent rester de 20 à 2i heures. On obtient un effet semblable avec l’bénia- 
toxyline, et s’il a été appliqué à une température de 50° C, le processus de 
coloration ne doit durer que de 10 à 20 minutes (1). Avec ces deux matici-es 
colorantes, le protoplasma, et surtout les noyaux, sont magnifiquement colo¬ 
rés, et les contours des cellules sont parfaitement distincts, de sorte qu’il est 
très facile de faire un dessin exact de tout le point végétatif. 
Pour monter les préparations, on peut se servir indifféremment de la gly- 
cérine ou du baume du Canada, mais, en général, je préfère ce dernier parce- 
que la matière colorante s’y conserve mieux. 
Si, cependant, l’observateur désire voir les ligures karyokinétiques dont 
abondent les tissus deméristème des racines, il est nécessaire d'avoir recoui’s 
aux couleurs d’aniline. Avec les racines que j’ai déjà plusieurs fois mention¬ 
nées, j’ai obtenu de beaux résultats de la manière suivante. 
Les slides, avec les coupes collées à leur surface, sont retirés de l’alcool où 
on les avait laissés ; on les lave pendant quelques instants dans l’eau pure et 
on les place dans une solution aqueuse de violet-gentiane R (Trommsdorf), 
obtenue en ajoutant 1 partie d’une dissolution alcoolique saturée de la ma¬ 
tière colorante dans 1000 parties d’eau ; ils y restent de 6 à 24 heures, ou, à 
une température de 50° C, beaucoup moins longtemps, (une heure). Après 
quoi, on les traite pendant quelques secondes par une eau acidulée avec 
1/8 pour 100, ou moins encore, d’acide chlorhydrique; puis on les lave bien, 
d’abord dans de l’eau contenant quelques gouttes d’ammoniaque (10 gouttes 
pour 300 cent, cubes d’eau), et ensuite dans l’alcool neutre. Enfin, les coupes 
sont montées dans l’essence de girolles, puis dans le baume du Canada. Des 
préparations réussies, de cette manière, montrent admirablement la division 
longitudinale des segments en lesquels se résout le noyau. 
Semblables, mais non aussi beaux, sont les résultats obtenus avec la safra- 
nine employée comme le violet-gentiane ou comme le recommande le 
(1) J’indique ici une formule pour obtenir en quelques heures une solution 
d’hématoxyline qui restera bonne pour l’emploi pendant très longtemps sans 
former de précipité. Comme elle a été donnée dans un travail éc^i^ en hollan¬ 
dais, sur un sujet d’anatomie pathologique, il peut se faire que beaucoup de 
botanistes n’en aient pas connaissance : 3 parties d’hématoxyline sont dissoutes 
dans tOO parties d’alcool absolu. 5 parties de cette solution sont ajoutées goutte 
à goutte dans 100 parties d’une solution aqueuse d’alun à 3 pour 100. Ce 
mélange est mis pendant deux heures dans un vase couvert, mais non herméti¬ 
quement fermé, aune température de 40° C. Puis, on le libre, et il est prêt pour 
l’usage. On ajoute un peu d’acide phénique et, pour les colorations, on l’étciid 
de dix volumes d’eau. — (D. O. Siegenbeck von Henkelom, Patkologiscli 
bindweefsel, 1885.) 
