JOURNAL DE MICROGRAPHIE. 
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La meilleure méthode pour préparer ce réactif est celle indiquée 
par le professeur Kleinenberg (Hématoxyline de Kleinenberg). On 
prépare une solution concentrée d’hématoxyline dans l’alcool absolu, 
et, au moment de l’emploi, on y verse quelques gouttes d’une disso¬ 
lution de chlorure de calcium, (ou de chlorure d’aluminium) dans l’al¬ 
cool à 70", à laquelle on ajoute un peu d’alun, puis 8 volumes 
d’alcool à 70". Ainsi, on opère avec des solutions assez étendues. 
Quand les préparations restent colorées avec excès, on les décolore 
avec un liquide composé de 200 volumes d’alcool pour 1 d’acide oxa¬ 
lique ou d’acide chlorhydrique. La coloration par l’hématoxyline est 
assez utile pour étudier la structure du ventricule et du proventricule 
des oiseaux, mais comme cette méthode exige des manipulations assez 
longues , et, en même temps, n’est pas d’un résultat tout à fait sûr, 
on ne peut l’adopter si l’on ne dispose que de peu de temps et' qu’on 
n’ait que peu de pièces à examiner. 
Un des meilleurs procédés de coloration que j’aie, jusqu’à présent, 
trouvés pour l’étude histologique du ventricule et du proventricule 
des oiseaux, et qui m’a réussi d’une manière assez satisfaisante dans 
mes recherches sur le Melopsütacus undulaius, est celui que m’ont 
fourni le carmin et le picrocarmin, non pas employés seuls, comme 
on le fait d’ordinaire et comme il est indiqué dans les manuels de tech¬ 
nique microscopique, mais associés ensemble. Chacun de ces deux 
réactifs, si utiles dans tant de recherches histologiques, n’a, pour 
l’étude des parois de l’estomac, qu’une valeur tout à fait médiocre 
quand on l’emploie seul, et cela encore en raison de son peu d’action 
élective, n’établissant de différence qu’entre le tissu conjonctif et les 
autres tissus, sans donner la moindre gradation de couleurs entre les 
muscles, les glandes, l’épithélium. J’emploie, au contraire, un mé¬ 
lange de parties presqu’égales d’une solution ammoniacale de carmin, 
et d’une solution médiocrement concentrée de picrocarmin dans l’eau 
distillée. Ce mélange m’a donné les meilleurs résultats. Après avoir 
laissé, pendant quelques minutes, la coupe faite au microtome se gon¬ 
fler dans l’eau distillée, je la place dans un verre de montre conte¬ 
nant le mélange de carmin et de picrocarmin. Si la solution est assez 
concentrée, il suffit d’uue demi-heure ou même un quart d’heure 
pour obtenir une coloration complète. Si la solution est faible, il 
faut un temps beaucoup plus long suivant les cas. Ensuite, les coupes 
doivent être lavées avec soin dans l’eau distillée et, si elles sont trop 
colorées, dans l’eau acidulée ; puis, déshydratées dans l’alcool absolu. 
Après quoi, il est utile de les laisser quelque temps dans la glycérine 
ou dans l’essence de girofles, et, finalement, on peut les monter dans 
l’un ou l’autre de ces deux liquides conservateurs. 
L’action élective du mélange carmin-picrocarmin consiste en ceci 
que, au moins sur l’estomac des oiseaux, les éléments épithéliaux 
