JOURNAL DE MICROGRAPHIE. 
61 
beaucoup mieux qu’on ne le faisait autrefois, la répartition du glycogène 
dans les fibres. On constate ainsi sa présence dans la partie protoplas¬ 
mique, et celle qui entoure les noyaux en est chargée, — son absence, 
au contraire, en d’autres parties , par exemple dans la partie striée. 
J’espère que cette méthode permettra de suivre plus exactement la 
répartition du glycogène chez l’adulte et chez l’embryon, mais il y a 
encore une grande imperfection dans cette méthode : quand on a 
coloré le glycogène par l’iode après l’action de l’acide osmique, la 
teinte, qui est très belle et très caractéristique, s’efface peu à peu et, 
au bout de 24 à 48 heures, il n’en reste rien ou presque rien. On ne 
peut pas obtenir de préparations démonstratives et persistantes. Je 
sais bien qu’on peut soulever la lamelle, pour maintenir la coloration , 
ou conserver les coupes dans l’eau avec de l’acide phénique ou du 
thymol, pour empêcher la putréfaction, et répéter l’opération chaque 
fois que l’on veut faire une observation, mais les coupes s’altèrent, des 
parties se détachent, se détériorent. Il faudrait pouvoir obtenir des 
préparations persistantes. Pour cela j’ai essayé une longue série de 
matières colorantes, et, jusqu’à présent, je n'en ai pas trouvé une 
seule qui colore la glycérine comme le fait l’iode. Mais je n’ai pas 
encore épuisé toute la liste de ces substances ; je me suis adressé dans 
ce but à mon savant collègue, M. Schutzenberger, qui m’a engagé à 
expérimenter des matières colorantes qui ne sont pas encore entrées 
franchement dans le commerce. Je me les procurerai, je les mettrai à 
l’épreuve et vous rendrai compte des résultats. Mais il serait très 
important, pour l’étude comparative des différents éléments et des 
tissus, la seule étude qui soit vraiment profitable en anatomie géné¬ 
rale , d’avoir une collection de préparations qu’on puisse examiner 
successivement, étudier et comparer. Pour cela, il est indispensable 
de trouver une matière colorante plus fixe que l’iode. 
Jusqu’à présent, j’ai décrit la cellule hépatique telle qu’elle se montre, 
avec la matière glycogène. J’ai fait surtout l’étude de la cellule hépa¬ 
tique du rat en pleine digestion, et je vous rappelle que la matière 
glycogène se trouve dans les mailles du réseau protoplasmique. Il 
fallait aussi étudier la cellule hépatique dépouillée de glycogène, non 
après une transformation cadavérique, mais après ün processus physio¬ 
logique. Rien de plus facile si l’animal est à jeun, et même après 48 
heures seulement, chez le rat. Nous avons laissé un rat pendant ce 
laps de temps, dans une cage, sans lui donner à boire ni à manger, et 
on l’a sacrifié par décapitation. Des fragments du foie ont été enlevés 
et placés dans l’acide osmique à 1 p. 100, pendant 12 à 20 heures, puis 
dans l’eau distillée pour enlever l’excès d’acide osmique, et l’on a 
pratiqué la dissociation. Les cellules isolées dans l’eau distillée, traitées 
par le sérum iodé fort, présentaient une coloration jaunâtre mais non 
