Allgemeine Methodik. Mikroskopische Technik. 
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Lüpke (1309) hat das bekannte „Cathcaet- Mikrotom“ insofern 
verbessert, als er das Messer hierzu etwas breiter, aber handlicher formen, 
die Glasplatten der Gleitflächen für dasselbe aufschrauben und die Mikro¬ 
meter scliraube mit einer Einschnapp-Vorrichtung zur Eegulirung der Schnitt¬ 
stärke versehen Hess. Johne. 
Liebreich (1306) schneidet frische Organstücke, nachdem er 
sie mit fest angedrückter Zinnfolie (alte Farbentuben etc.) umgeben. Die 
Messer sollen nicht dabei leiden! CzaplewsJd. 
Winkler (1345) bespricht zuerst die früher geübten Methoden zur 
Anfertigung von Mikrotomschnitten aus Bacterienculturen, wie 
sie von Plaut, Neissek, Hausee u. A. angegeben worden sind. Der Letz¬ 
tere hat das Formalin mit gutem Erfolg zur Härtung verwendet. Das origi¬ 
nellste der früheren Verfahren war wohl das von Lipez, der direct Deck- 
glasculturen mit geringen Mengen von Agar anlegte, sie mit dem betreffen¬ 
den Mikroorganismus beschickte, dann, wenn Wachstlium eingetreten war, 
die Deckgläser im Schwefelsäure-Exsiccator trocknete und als Trockenprä¬ 
parat färbte. Verf. hat die Härtungsprocedur der Eeagensglasculturen ganz 
zu umgehen gesucht, um die dabei nicht zu vermeidenden Schrumpfungen 
und Schädigungen auszuschalten. W. verfuhr so, dass er — zuerst hat er 
dazu Kartoffeln benützt — mit einem Korkbohrer ein Stück aus einer Kar¬ 
toffelscheibe her aushob und so eine cylindrisclie Vertiefung erhielt, in die 
er dann Agar oder Gelatine ausgoss. Er konnte dann Stiche anlegen oder 
gleich das Nährmedium, mit dem betr. Bacterium beschickt, ausgiessen und 
erstarren lassen. Später hat sich ihm zu demselben Zweck weiches Paraffin 
vom Schmelzpunkt 42^ als praktischer erwiesen. Es war so auch möglich, 
anaerobe Culturen in derselben Weise zu behandeln,' indem man die Ober¬ 
fläche des Agars wieder mit Paraffin zugiessen kann. Das ganze Kartoffel¬ 
oder Paraffinprisma kommt, wenn das gewünschte Wachsthum eingetreten 
ist, direct in die Mikrotomklemme und man schneidet unter Alkohol. Für 
die Färbung solcher Schnitte empfiehlt W. besonders verdünntes Karbol¬ 
fuchsin (jedesmal frisch zu bereiten!). Die sonst geübten Methoden, Löef- 
LEE’sches Methylenblau, die GuAM’sche oder WEiuEET’sche Methode ergaben 
weniger glückliche Eesultate. Man bringt am besten zur Färbung direct 
einen Tropfen des verdünnten Karbolfuchsins auf den aufgelegten Schnitt 
und legt das Deckglas auf. Nach entsprechender Zeit sind die Bacterien 
intensiv, der Nährboden nur schwach roth gefärbt. Die Färbung kann später 
wiederholt werden, indem man mit Alkohol abspült, darin die Präparate auf¬ 
hebt und gegebenen Falls wieder neues Karbolfuchsin auf bringt. Auch die 
Färbung in unverdünntem Karbolfuchsin ist möglich, die Entfärbung ge¬ 
schieht mit Alkohol, Trocknen, das Immersionsöl kommt auf den Schnitt ohne 
Deckglas. Die Methode, wenn sie so einfach gelingt, wie angegeben, hat zwei¬ 
fellos grosse Vorzüge. Man kann die natürliche Lagerung der Bacterien in 
allen Schichten gut und ohne Verzerrung durch Härtungsreagentien studi- 
ren, besonders auch Fructifications- und Sprossungsvorgänge in jedem ge¬ 
wünschten Stadium untersuchen. Agar hat sich besser bewährt, als Ge¬ 
latine. Henke. 
Baumgarten’s Jahresbericht IX 
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