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des solutions au fluorure de sodium à 2 % et au chlorure de 
sodium à 10 %. 
Aux solutions chlorurées, nous avonsajoutédu chloroforme, 
car nous avions observé qu’au bout d’un laps de temps très 
court, malgré cette forte concentration, il s’y développait des 
micro-organismes de la putréfaction. 
Les bouchons en liège ont été stérilisés et rendus antisep¬ 
tiques par un court séjour dans une solution bouillante de 
sublimé à 1 °/o O • 
Dans toutes les solutions salines de fibrine que nous avons 
employées et suivant la longueur du séjour de ces solutions 
dans l’étuve, dont la température a été maintenue entre 38° 
et 40° centigrades, il se trouve un dépôt plus ou moinsconsi* 
dérable formé de fibrine et de ses impuretés. 
Nous avons donc dû doser dans ces solutions les matières 
albuminoïdes totales, les matières albuminoïdes dissoutes et 
les matières albuminoïdes incoagulables. Mais au lieu de doser 
les matières albuminoïdes elles-mêmes, nous avons dosé 
l’azote, parce que ce procédé est plus simple et que les diffé¬ 
rentes substances albuminoïdes contiennent, à peu de chose 
près, les mêmes quantités d’azote. Le procédé employé a été 
celui de Kjeldahl. 
Pour doser cet azote de provenance différente, nous avons 
procédé de la manière suivante : 
Le flacon contenant la solution de fibrine est retiré de 
l’étuve et dilué à un volume donné. Après avoir agité forte¬ 
ment le liquide, afin d’obtenir une solution homogène, on 
laisse déposer. On filtre ensuite une quantité déterminée de 
liquide (filtrat A) qui servira au dosage de l’azote des matières 
albuminoïdes dissoutes et de l’azote des matières albuminoïdes 
incoagulables. 
Le reste est dilué jusqu’au volume primitif, en ajoutant une 
solution de soude caustique telle que le liquide total en con¬ 
tienne 1 °/ 00 . On prend la précaution de faire agir cette solu¬ 
tion de soude sur le filtre pour dissoudre les fines particules 
de fibrine qui pourraient y rester. 
