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Chemische Physiologie 
als Nährstoff zu verwenden. Um so interessanter ist es, daß eine Anzahl 
Microorganismen das Betain zu verwerten vermögen. Verff. versuchten 
in einer 0,02 % freies Betain als einzige Stickstoffquelle enthaltenden 
Nährlösung eine große Anzahl Microorganismen zu cultivieren. Während 
alle ober- und untergärigen Bierhefen sowie eine große Anzahl unter¬ 
suchter Culturhefen auf Betainlösungen kein Wachstum zeigten, gelang es, 
die meisten hautbildenden Hefen, wie Kahm liefen, Willia anomala, 
Pichia membranefaciens und P. farinosa, sowie die Mimbobierliefe 
auf ihnen zu cultivieren. Eine ganze Anzahl Schimmelpilze, besonders 
gut Aspergillus niger, >y Penicillium glatt cum“ und Citromyces Pfeffe- 
rianus, assimilierten ebenfalls das Betain. Um den biochemischen Ver¬ 
lauf des Betainabbaues aufzuklären, wurden mit den besonders gut ge¬ 
deihenden Microorganismen diesbezügliche Versuche unternommen. Nur 
bei Willia anomala gelang der sichere Nachweis eines stickstofffreien 
Abbauproductes aus dem Betain, nämlich der Glycolsäure, die aber 
auch nur auftrat, wenn anstatt des Zuckers in der Nährlösung Alcohol als 
Kohlenstoffquelle geboten wurde. Die Spaltung kann man sich nach fol¬ 
gender Gleichung vor sich gehend denken. 
(CH 3 ) 8 N • CH 2 • COO + H 2 0 = CH 2 (OH) • COOH + N(CH 3 ) 3 . 
Das zu erwartende Trimethylamin, das nie nachzuweisen war, entsteht 
wohl nur intermediär und zerfällt bereits in statu nascendi unter weiterer 
Wasseranlagerung in Ammoniak und Methylalcohol, welch ersteres im 
Moment der Abspaltung zum Aufbau des Körpereiweißes verbraucht wird, 
während auch letzteres in Form irgendwelcher Oxydationsproducte Ver¬ 
wendung findet. Daß der Stickstoff des Betains für den Eiweißaufbau in 
Form von Ammoniak aus dem Betain herausgespalten wird, geht sicher 
daraus hervor, daß die Culturflüssigkeit bei Aspergillus niger und 
yy Penicillium glaucum“ starke Anunoniakreaction auf weist. Culturver- 
suche mit Trimethylaminphosphat und mit Methylalcohol in den Nähr¬ 
lösungen brachten den Beweis, daß beide als Nährstoffe für Microorga- 
nismen in Betracht kommen. W. Fischer (Bromberg). 
SARTORY, A. et GlMEL, G.j Pouvoir antiseptique du perborate 
de soude associe ä l’iodure de potassium en presence de 
Fe au (Compt. Bend. Soc. Biol. 1913, 75 , 290—291 [15 juill.]). 
Une solution de perborate de sodium (Bo0 3 Na+ 4H 2 0) additionnee 
d’une solution aqueuse de KI donne des periodates et iodates, de Feau 
oxygenee, du metaborate de Na, et de l’oxygene libre. La solution contient 
donc 3 elements antiseptiques, Bo, I, et 0. Le pouvoir antiseptique le 
plus eleve est obtenu avec une solution de Ogr., 80 de perborate et de 
Ogr., 20 de KI dans un litre d’eau. Cette solution tue les cultures de 
Bacille d’EßERTH, de coli-bacille, de streptocoque et de staphylocoque 
dore, par contre le Bacillus subtilis lui resiste, ainsi que les moisissures 
(. Penicillium , Rhizopus ), ce qui pennet de priver un melange de cultures 
de la plupart de ses bacteries en laissant subsister les Champignons. 
_ R. Maire (Alger). 
SERGENT, L. ? Sur la coloration des u rin es par le Lactaire 
delicieux (Bull. Soc. Mycol. 1914, 30 , Fase. 1 [10/20 mars], 95—96). 
L’auteur revient sur Fetude de la coloration rouge que prennent les urines 
apres Fingestion des Lactarius delicious. II montre que le pigment du 
Lactaire est l’unique cause de cette coloration. R. Maire (Alger). 
