séance du 27 juin 1884. 
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Si maintenant on plonge dans l’eau une partie seulement d’un frag¬ 
ment de plante dont l’autre partie demeure dans l’air, par exemple la 
partie inférieure d’une branche coupée, du pétiole d’une feuille, du pédi- 
ceîle d’une fleur, etc., on verra la région immergée se détruire peu à peu 
de bas en haut à partir de la section, comme il vient d’être dit et pour la 
même cause, tandis que la région émergée demeure en bon état ou sim¬ 
plement se dessèche. Il y a donc quelque obstacle à ce que le développe¬ 
ment de l’Amylobacter dans les tissus se poursuive beaucoup en montant 
dans la région émergée. D’autre part, si l’on étudie la portion de l’organe 
située à la limite des deux milieux, on s’assure facilement que l’Amvlo- 
bacter ne s’arrête pas exactement au niveau de l’eau ; il remonte plus 
haut, détruit une petite portion de la région aérienne, et seulement alors 
s’arrête, sans poursuivre plus loin son envahissement. L’obstacle qu’il 
rencontre n’est donc pas uniquement l'absence d’immersion. Cette double 
remarque m’a conduit à tenter, sur le développement de l’Amylobacter 
dans les organes végétaux à l’état de vie normale, quelques expériences, 
dont les résultats, tout incomplets qu’ils sont encore, m’ont paru de na¬ 
ture à intéresser un instant la Société. 
Mes premiers essais ont porté sur des organes à l’état de vie latente, 
notamment sur des tubercules de Pomme de terre et sur des graines de 
Fève préalablement imbibées d’eau. 
Dans un tubercule de Pomme de terre placé à l’air sur une assiette, 
on introduit une goutte de liquide tenant en suspension des spores 
d’Amylobacter; l’inoculation a lieu tantôt près de la surface, sous la 
couche subéreuse, par une piqûre tangentielle, tantôt à diverses profon¬ 
deurs, et jusqu’au centre même de la moelle, par extraction d’un étroit 
cylindre de tissu que l’on remet en place en manière de bouchon, après 
avoir déposé au fond de la cavité la goutte sporifère. C’est l’inoculation 
profonde qui a donné les meilleurs résultats. Les tubercules inoculés 
sont placés ensuite à l’étuve à 35 degrés, à côté de tubercules intacts des¬ 
tinés à servir de témoins. Au bout de deux jours, on voit déjà le petit 
bouchon se détacher sous l’influence de la pression des gaz internes et 
par l’orifice s’échapper une mousse blanche, formée en grande partie de 
grains d’amidon et d’articles d’Amylobacter à divers états de développe¬ 
ment. Cette mousse augmente les jours suivants et en même temps se 
dessèche en formant à l’orifice une masse poreuse grisâtre en forme de 
champignon. En même temps le parenchyme interne se ramollit, se 
liquéfie par la dissolution progressive de toutes les cloisons cellulaires, à 
partir du centre d’inoculation; finalement, tout dégagement de mousse et 
de gaz cesse à l’orifice, et alors le tubercule, bien que n’ayant pas changé 
de forme, se trouve réduit à un mince sac de liège rempli d’un liquide épais, 
imperforé dans toute sa surface et bouché au point d’inoculation par le 
