L’ANALYSE EXPÉRIMENTALE DE LA FÉCONDATION 
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ci-dessus et qui a été repris tel quel pour des essais sur Ranci esculenta. 
Voici les données d'une expérience parfaitement réussie, où tous les œufs 
étaient bien fécondés et ont évolué normalement après les mesures. Mis au 
contact du sperme pendant cinq minutes seulement, le matériel utérin, soi¬ 
gneusement égoutté, était porté immédiatement dans la cuve à expériences, 
de façon que l'imbibition fût réduite au minimum et que les mesures pussent 
commencer avant que la traversée des spermatozoïdes fût achevée. 
Les chiffres sont ici plus élevés; mais je noterai que la cuve n’était pas 
pleine, et que la section aux électrodes était peut-être réduite de moitié. La 
fécondation étant faite à 6 h. 12, les mesures commençaient à 6 h. 21, soit 
neuf minutes après l’imprégnation ; elles finissaient à 7 heures. 
Mesures de résistance. 
(Œufs de Rana esculenta fécondés.) 
TEMPS 
après l’imprégnation 
RÉSISTANCE 
9 minutes. 
.811 
ohms. 
12 minutes. 
.707 
— 
15 minutes. 
.753 
— 
16 minutes 1/2. 
.776 
— 
19 minutes. 
.776 
— 
24 minutes. 
..776 
— 
30 minutes. 
.788 
— 
38 minutes. 
.788 
— 
45 minutes. 
.788 
— 
48 minutes. 
.788 
— 
Si nous adoptons le nombre 811 pour la résistance des œufs 
encore vierges (non touchés par le sperme), de façon à appré¬ 
cier la chute et le relèvement de fécondation avec les nombres 
707 et 788, il est visible que ces oscillations sont , aussi rigou¬ 
reusement que possible, proportionnelles à celles que nous avons 
notées chez les œufs activés de Rana fusca. 
Loeb et Wasteneys se sont assurés récemment que le traite¬ 
ment correcteur hypertonique n’introduit aucun changement 
appréciable dans les oxydations de l’œuf d’Oursin activé ; que 
l’hypertonie n’accélère pas davantage ces oxydations sur l’œuf 
fécondé. 
On voit que, chez nos œufs d’Amphibiens, les variations de 
conductibilité paraissent identiques pour /’activation simple et la 
fécondation. 
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