A . Dalcq . — Modifications physiologiques 
cas où le défaut de synchronisme nuit aux réactions d’ensemble, 
l’œil peut constater le comportement different des œufs suivant 
le stade de développement auquel ils sont parvenus. Les 
tableaux II et III montrent bien, dans deux cas particulièrement 
favorables, la sériation des phénomènes : 1° courte phase de 
plasmolyse énergique qui succède à la fécondation ; 2° phase de 
durée variable où les œufs ne sont que peu ou pas déformés ; 
l’examen cytologique des œufs fixés 20 minutes après la féconda¬ 
tion (tableau II) indique que cette phase coïncide bien avec celle 
de l’aster spermatique; 3° phase de plasmolyse intercinétique 
(tableau III); 4° nouveau changement de signe de la réaction au 
moment où se déclanchent les segmentations (tableau III). 
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Je puis donc confirmer les observations fondamentales qu’a 
faites Herlant en appliquant aux œufs d’Oursin la méthode 
qu’il avait imaginée. Elles se vérifient de point en point chez 
Asterias glacialis , non seulement pendant le premier cycle 
cellulaire de l’œuf fécondé, mais elles se retrouvent aussi pen¬ 
dant la maturation. J’entends par là que la solution d’épreuve 
constituée d’eau de mer rendue hypertonique par NaCl, dans 
les proportions indiquées, révèle une succession de phases de 
plasmolyse et d’intégrité morphologique au moins apparente. 
Ces phases d’intégrité correspondent à la première et à la 
seconde cinèse de maturation, à l’aster spermatique et à la pre¬ 
mière cinèse de segmentation. Quant au moment précis où 
apparaît le changement de signe de la réaction, mon matériel 
ne m’a pas permis de voir si c’est bien, comme chez l’Oursin, 
le début de l’anaphase; toutefois, en ce qui concerne la première 
cinèse de maturation, j’ai lieu de croire que la phase de plasmo¬ 
lyse cesse en même temps que (ou en tous cas peu de temps 
après) le flétrissement de la vésicule germinative. 
Ces réactions sont donc celles que révèle la « solution- 
témoin ». Il importe de signaler qu’il y a cependant des diffé- 
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