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portions a, b, d et e. On se débarrasse par tiltration de la solu¬ 
tion éthérée de mastic. On lave le résidu resté sur le filtre à 
plusieurs reprises par de l’éther, puis on le redissout dans 
l’eau. Cette solution aqueuse est additionnée d’un, de trois ou 
de vingt volumes d’alcool absolu pour précipiter la protéose 
examinée. On procède à la purification de la portion de pro¬ 
téose b entraînée par le mastic de la même façon que pour la 
portion a non entraînée par cet adsorbant. 
Les filtrats provenant des portions c et / d’hétéroalbumose, 
de protoalbumose, de thioalbumose ou de synalbumose, trai¬ 
tées par le kaolin, sont réunis et réduits dans le vide à 35° à un 
petit volume. On précipite alors l’iiétéroalbumose par un, la 
thioalbumose ou la synalbumose par trois, la protoalbumose 
par vingt volumes d'alcool absolu. On purifie les portions de 
protéose c non entraînées par le kaolin en les dissolvant et les 
reprécipitant à plusieurs reprises de la même manière que les 
portions des mêmes protéoses entraînées ou non entraînées par 
le mastic. 
Je ne suis pas parvenu à récupérer les portions de protéoses 
entraînées par le kaolin. 
Les faibles quantités d'hétéroalbumose et de synalbumose 
recueillies après traitement par le mastic ou par le kaolin m'ont 
seulement permis de déterminer leurs teneurs en azote. L'étude 
des deux fractions séparées par le mastic dans la protoalbumose 
et la thioalbumose de Pick et des portions de ces protéoses 
non précipitées par le kaolin, a pu être poussée un peu plus 
loin. Examinons rapidement les données ainsi recueillies. 
1° Hétéroaibumose a (non entraînée lors de la floculation du 
mastic). 
0 §r 1468 nécessitent l’emploi de 16 cc 7 de n/ 10 H 2 S() 4 = 
15.93% N. 
0 gr 1656 nécessitent l’emploi de 18 cc 9 de n/ i0 H 2 S0 4 = 
15.98 % N. Moyenne : 15.95 % N. 
