Lepesehkin, Kenntnis des Mechanismus der Variationsbewegungen etc. 325 
in diesen Versuchen ausgeführt wurde (die Salpeterkonzentration 
wurde von ihm nur bis 0,5 ^/o bestimmt); vielleicht übte auch das 
Zusetzen eines Anilinfarbstohes zur plasmolysierenden Lösung (1. c. 
26, 27, 31 u. a.) einen schädlichen Einfluß auf die Zellen, die da¬ 
her anders reagieren konnten, aus. 
Wenden wir uns jetzt der dritten Methode zu. Die Versuche 
wurden folgendermaßen ausgeführt: Das betreffende Gelenk wurde 
mit dem Mikrotom in Querschnitte (0,08 mm Dicke bei Phaseolus 
und 0,04 mm Dicke bei Mimosa), aber nur bis zur Hälfte seiner 
Länge zerlegt (siehe auch S. 322). Die Schnitte wurden teilweise 
sofort zur Bestimmung des Salpeterwertes des Zellsaftes, größten¬ 
teils aber zur nachfolgenden Bestimmung des isotonischen Koeffi¬ 
zienten von Salpeter im Lichte (diffuses Tageslicht) verwendet. 
Die andere zurückgebliebene Gelenkhälfte mit dem Blattstiele wurde 
in mit Wasserdampf gesättigte Atmosphäre gebracht und entweder 
sogleich verdunkelt oder bis zum Eintritt der Dämmerung in 
diffusem Tageslicht belassen, um nachher verdunkelt zu werden. 
Die Verdunklung dauerte 2 Stunden. Danach wurde das Ganze 
ins dunkle Zimmer gebracht (die Versuche wurden im Juni in 
St. Petersburg angestellt und es war im Arbeitszimmer nicht ge¬ 
nügend dunkel) und die Gelenke bei Kerzenbeleuchtung (eine Kerze 
im Abstande von 6 Meter) in Querschnitte zerlegt. Die Schnitte 
wurden teilweise sofort zur Bestimmung des Salpeterwertes des 
Zellsaftes, größtenteils aber zur nachfolgenden Bestimmung des 
isotonischen Koeffizienten von Salpeter im Dunkeln verwendet. 
Die Zylindergiäschen mit plasmolysierenden Lösungen befanden 
sich in einer schwarzen Schachtel. Das Mikroskopieren fand bei 
Kerzenbeleuchtung statt und dauerte höchstens 1—IV 2 Minuten. 
In meinem oben zitierten Aufsatze wurde darauf hingewiesen, 
daß sich die Konzentration des Zellsaftes der Gelenke in plas¬ 
molysierenden Zuckerlösungen eben so rasch vermindert wie in 
reinem Wasser. Bei der Bestimmung des Zuckerwertes der Ge- 
lenkzellen muß man daher die erhaltenen Zuckerkonzentrationen 
stets auf die Exosmose der Zellsaftstoffe korrigieren. Um aber 
diese Korrektur, welche nur sehr annähernd gemacht werden kann, 
zu vermeiden, wurden in meinen Versuchen die Salpeterkonzen¬ 
trationen sofort nach der Feststellung der Zuckerkonzentrationen 
bestimmt, d. h. die Konzentrationen beider Stoffe, welche dem Zell¬ 
saft der Gelenkschnitte nach dem Verbleiben derselben während 
einer gewissen Zeit in den plasmolysierenden Zuckerlösungen iso¬ 
tonisch waren, festgestellt. Die erhaltenen Salpeterkonzentrationen 
bedürfen dagegen keiner Korrektur, weil die Saftkonzentration in 
den plasmolysierenden Salpeterlösuugen unverändert bleibt (s. oben). 
Nach dem Zerlegen des Gelenkes in Querschnitte wurden die 
letzteren in Zuckerlösungen, welche sich um 0,6 0/0 unterschieden, 
gebracht und verblieben dann gewöhnlich 1 Stunde 10 Min. bis 
1 Stunde 40 Min. (Phaseolus) oder 20—30 Min. (Mimosa)m diesen. Q 
b Diese Zeit reichte zum Annehmen einer Kugelform durch den plas- 
molysierten Protoplasten aus. Die Plasmolyse im Falle von Mimosa wurde nur 
an den Gerbstoff ballen enthaltenden Schnittzellen beobachtet. Die Zellen, welche 
keine Gerbstoffballen mehr enthielten, wurden als absterbend betrachtet, 
