330 Lepeschkin, Kenntnis des Mechanismus der Variationsbewegungen etc. 
befanden und voneinander um 0,01 ^/o im FaUe von Salpeter, und 
um 0,05‘^/o im Falle von Zucker unterscliieden, durch Yerdünuung 
einer Ausgangslösung' vorbereitet. Dann folgte die Konzentrations¬ 
bestimmung, welche gewöhnlich gleichzeitig an 5—8 Epidermis- 
schnitten gemacht werden konnte. Die Konzentrationen der Lö¬ 
sungen von Salpeter und Zucker, in welchen nur die Hälfte der Zellen 
des zu untersuchenden Epidermisschnittes plasmolysiert war, wimden 
als die dem Zellsaft des betreffenden Schnittes isotonischen Kon¬ 
zentrationen angenommen. Diese Konzentrationen konnte man sehr 
leicht bis 0,01 ^/o Salpeter und 0,05% Zucker bestimmen. So war 
das Verhältnis der plasmolysierten Zellen zu derjenigen der nicht 
plasmolysierten in einem der Schnitte in der 1,12% S alp et erlösung- 
ungefähr gleich 2: 3, während dieses Verhältnis in der 1,14% Lö¬ 
sung schon 4:1 war. Wenn auch in der 1,137o Salpeterlösung 
dieses Verhältnis nicht genau 1:1 war, so wurde doch diese Kon¬ 
zentration als die isotonische angenommen, weil die dintte Zahl 
hinter dem Komma nicht berücksichtigt zu werden brauchte. 
Um eine Korrektur der Salpeterendosmose in den Zellsaft 
wähi’end der Plasmolyse zu vermeiden, folgte die Bestimmung der 
isotoni^chen Zuckerkonzentration direkt nach der Plasmolyse mit 
Salpeter. Die Bestimmung der isotonischen Salpeterkonzentration 
verlangte gewöhnlich 50—60 Minuten, während die Zuckerplasmolyse 
gewöhnlich nur 30—45 Minuten erforderte. Das Miki’oskopieren 
wurde unter der Vergrößerung 1:150 gemacht. 
Die Versuche über die Lichteinwirkung auf die Permeabilität 
der Plasmamembran der Tradescantia-7iQ\iQn wnrden in der fol¬ 
genden Weise ausgeführt: 
Zunächst wurden isotonische Koeffizienten von Salpeter für 
5—8 Epidermisschnitte, welche von einer sich in zerstreutem 
Tageslicht befindenden Pfianze entnommen waren, bestimmt; die 
Pflanze wurde gleichzeitig ins Dunkle gebracht, wo sie IV 2 Stunde 
verblieb; alsdann wurden 5—8 neue Epidermisschnitte von derselben 
Blattrippe entnommen, und jetzt die isotonischen Koeffizienten im 
Dunkeln bestimmt. In anderen Versuchen wurden aber Epidermis¬ 
schnitte von der belichteten Pflanze entnommen und jeder Schnitt 
in zwei gleiche Teile geteilt; von den auf solche Weise erhaltenen 
Schnitthälften wurden die einen 1V 2 Stunden im zerstreuten Tages¬ 
licht belassen, die andern aber ins dunkle Zimmer gebracht, wo 
sie auch IV 2 Stunde verblieben. Darnach wurden die isotonischen 
Koeffizienten an den Schnitten beider Portionen bestimmt. 
In den Versuchen dritter Art, welche besonders überzeugend 
waren, wurden die Epidermisschnitte, nachdem die isotonischen 
Koeffizienten an ihnen im Lichte bestimmt waren, in Wasser ge¬ 
bracht (Deplasmolyse), ins dunkle Zimmer übertragen und. nach 
Verlauf von I 1 / 2 —2 Stunden von neuem untersucht, indem man 
nun die isotonischen Koeffizienten an denselben Schnitten jedoch 
im Dunkeln bestimmte. Die gleichen Versuche wurden auch in 
umgekehrter Kichtung gemacht, d. h. zunächst bestimmte man die 
isotonischen Koeffizienten im Dunkeln und nachher an denselben 
Schnitten iin Lichte. Das Mikroskopieren im Dunkeln fand bei 
