Klein, Nachweis und Vorkommen von Nitraten und Nitriten etc. 145 
Fig. 7). Doppelbrechung, keine Interferenzfarben. 
Ebenso wie das Nitrat gerade Äuslöschung. Bei 
Gegenwart von wenig Oxalsäure entsteht nur ein 
Niederschlag von gallertartigem Aussehen, dessen 
kugelige Flocken im polarisierten Licht schwarze 
Kreuze zeigen. 
Die Reaktion verläuft bei niedrigen Temperaturen vollstän¬ 
diger. Die Fällung tritt in Schnitten lokalisiert ein, doch muß das 
Deckglas schnell aufgelegt werden, da sonst die Kristalle aus den 
angeschnittenem Zellen herausschwimmen. Dauerpräparate sind 
im Reagens sehr gut haltbar. 1 ) 
Ich habe die Reaktion mitNitron zum Nachweis von Nitraten 
bei den verschiedensten Pflanzen angewendet und mich von ihrer 
Brauchbarkeit überzeugt. Die Niederschlagsbildung wird, soweit 
ich feststellen konnte, durch nichts beeinträchtigt, man kann diese 
Reaktion also stets anwenden. Sie leistet besonders dort; wo die 
Diphenylaminreaktion versagt, sehr gute Dienste. Im allgemeinen 
habe ich die von Busch angegebene optimale Lösung von 10 Pro¬ 
zent Nitron in 5 prozentiger Essigsäure angewendet. In Schnitten 2 ) 
von • sehr nitratreichen Pflanzen, wie z. B. Tradescantia u. a., ist 
der Niederschlag aber so dicht, daß er alles überdeckt. Es erweist 
sich dann eine öprozentige Nitronlösung als zweckmäßiger, da 
diese nicht quantitativ fällt. 
’) Die Essigsäure, welche zum Auflösen des Nitron angewendet wird, 
fixiert die Schnitte, wodurch die Membranen permeabel werden. Allem Anschein 
nach tritt das Nitrat schneller aus dem Schnitt heraus, als das Nitron ein¬ 
zudringen vermag, so daß sich selbst bei schnellem Arbeiten oft zahlreiche 
Kristalle an der Epidermis festsetzen. Fluri (18, p. 115 f.) hat diese Reaktion 
speziell zur Untersuchung von Spirogyra, deren Plasmapermeabilität er prüfte, 
angewendet. „Permeable Spirogyrafäden wurden in 2,5prozentige Kalisalpeter¬ 
lösung übertragen, dann dreimal in destilliertem Wasser ausgewaschen; hierauf 
folgte auf dem Objektglas unter dem Mikroskop Zusatz von Nitronlösung. An 
der Oberfläche traten weiße Nadeln auf; im Zellinnern, sowohl im Protoplast 
wie auch im Zellsaft, blieb jedoch der Niederschlag aus. Wird der Algenfaden 
direkt aus dem Salpeterbad mit Nitron behandelt, so entsteht in der Flüssig¬ 
keit außerhalb der Zellen ein derart dichter Niederschlag, daß die Fäden un¬ 
sichtbar werden.“ Entfernt man diesen, so sieht man, daß das Innere der Zellen 
keine Kristalle enthält. Nach Fluri kämen hierfür zwei Möglichkeiten in 
Betracht. Das Nitrat wird so fest an das Plasma gebunden, daß es nicht mehr 
nachweisbar ist, oder es ist in zu geringen Mengen vorhanden. Bei Zusatz des 
Reagens wandert überdies noch ein Teil hinaus, so daß der in der Zelle ver¬ 
bleibende Rest unterhalb der Empfindlichkeitsgrenze liegt. Selbstverständlich 
kann man nur die zweite Annahme berücksichtigen, doch erhält man, wie ich 
mich durch sorgfältige Versuche überzeugt habe, überhaupt keine Reaktion, 
wenn man die Fäden gründlich wäscht. Läßt man die Algen einige Minuten 
in destilliertem Wasser, das man mehrmals wechselt, dann tritt keine Reaktion 
ein. Um die erste Annahme als unrichtig hinzustellen, hat Fluri die Fäden 
vor der Behandlung mit Nitron mit Alkohol fixiert, wobei er augenscheinlich 
vergaß, daß Nitrate ziemlich alkohollöslich sind. Die einzig richtige Annahme 
wird sein, daß in die Fäden überhaupt kein Nitrat eindringt. Was die Be¬ 
merkung Fluri’s zur Diphenylaminreaktion mit ebenso behandelten Fäden-an- 
belangt (p. 116), so ist ihr entgegenzuhalten, daß es sich hier um eine Kontakt¬ 
reaktion handelt, die Blaufärbung demnach selbst bei Gegenwart von Nitraten 
nicht im Zellinnern, sondern außerhalb auftreten muß. 
2 ) Zur Bestimmung der Lokalisation eignen sich Längsschnitte meist 
besser als Querschnitte. 
Beihefte Bot. Centralbl. Bd. XXX. Abt. I. Heft 1. 
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