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colorant, nous lavons à l’eau contenant un peu d'ammo- 
niaque et puis dans l’eau pure. Ensuite, nous traitons nos 
coupes pendant quelques secondes par une solution con- 
centrée de picro-carmin à chaud (45° à 50° C.). La couleur 
bleue s’évanouit et est remplacée par du jaune-brun. A ce 
moment, nous lavons rapidement nos coupes dans de 
l’eau ammoniacale pour faire reparaître la coloration 
bleue. Dans un grand nombre de cas, surtout quand les 
coupes sont assez minces (5 v), la décoloration est juste à 
point. En examinant au microscope, on voit le proto- 
plasme cellulaire entièrement décoloré; les nucléoles 
seuls sont colorés en bleu intense. On déshydrate, on 
éclaireit et l’on monte au baume. Dans d’autres cas, au 
contraire, le protoplasme reste coloré en bleu; alors il faut 
recommencer, même deux ou trois fois, le traitement au 
picro-carmin et à l’eau ammoniacale jusqu’à ce que la 
décoloration soit convenable. 
Exécutée de la sorte, cette méthode donne des prépa- 
rations de toute beauté, dans lesquelles apparaissent les 
nucléoles et les centrosomes, s’il y en a, ‘avec une net- 
teté remarquable. Cette méthode a sur l’ancien procédé 
à l’hématoxyline ce grand avantage de bien colorer les 
nucléoles et les centrosomes, tout en gardant incolore la 
substance chromophile qui gênerait l'observation. Nous 
ferons remarquer toutefois que si la safranine colore avec 
une intensité égale le nucléole et le centrosome, l'emploi 
de l’hématoxyline donne au centrosome une coloration 
un peu plus faible que celle du nucléole. Sauf cette petite 
différence, les deux procédés se valent et sont excellents. 
C’est à dessein qu’au cours de ces recherches nous ne nous 
sommes pas servi de l’hématoxyline au fer de Heiden- 
hain, et cela dans le but d’éviter des conclusions erro- 
