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iodio sul portaoggetti non distruggeva i corpuscoli nè dava al preparato colorazione 
alcuna. Era quindi eliminato il caso degli aghi di sublimato e dei granuli d’amido. 
Una corrente di acido cloridrico mi distruggeva in parte i corpuscoli ma alterava 
anche il parenchima. Potevo dunque sospettare che in parte concorressero a questa 
alterazione del preparato i corpuscoli calcarei che in grande quantità si trovano nel 
parassita. Trattai allora i pezzi con decalcificatori (acido cromico, acetico, picrico-sol- 
forico); ma nulla ottenni di meglio. Passai quindi ad altri fissatori : liquido del Peremy, 
alcool a 90, liquido del Kleinenberg. sublimato alcoolico a freddo e a caldo, liquido 
del Merkel, liquido del Delage, ecc. 
Variai le sostanze coloranti, trattando successivamente la tenia con carminio 
horico, carminio allumico, carminio litico, picrolitiocarminio, ematosellina Sanfelice, 
ematosellina Herlik, ematosellina Bòhemer, ematosellina alcoolica di Kleinenberg. 
Dubitai che il calore dell'imparaffinazione potesse alterare l'animale e impa- 
raffinai nel vuoto, inclusi in celoidina. Ottenni sempre il medesimo resultato. Variai 
successivamente la durata del tempo d’immersione ed i liquidi sopprimendone talora 
uno talora un altro; ma sempre senza nulla ottenere. Però da tutti questi tentativi 
potei convincermi che il lungo soggiorno nell'alcool ed un prolungato trattamento con 
sostanze acide alterava decisamente ì pezzi. M'accorsi ancora che fra tutti i miei pre- 
parati, i mediocri erano. sempre quelli fissati con acido picrico-solforico. Mi fermai 
allora sopra questo reagente variando successivamente ed alternativamente le singole 
unità che lo componevano ottenendo migliori risultati prevalente l'acido picrico. Eliminai 
allora definitivamente l’acido solforico fissando col solo acido picrico in soluzione 
acquosa satura ottenendo così dei pezzi fissati perfettamente adattabili a tutte le colo- 
razioni prima tentate. Fatte quindi varie prove con l'acido picrico ho ottenuto i mi- 
gliori risultati col seguente metodo: tolto il parassita dall’intestino lo immergo vivo 
nell’acido picrico; sciacquatolo dal mucco intestinale lo passo di nuovo in acido pi- 
crico pulito dove resta per 7 ore. Da qui in alcool a 70 fino a che lo strobila della 
tenia prende una tinta di un giallo pallido. Coloro i pezzi a preferenza con l’ema- 
tossellina Sanfelice lasciandoveli per 5 ore, quindi in alcool acidulato con acido ace- 
tico per un'ora circa. Li passo quindi successivamente negli alcool a 70, a 90 ed 
assoluto. Ma come ho detto di sopra, alterando l'alcool i pezzi se lasciativili per 
molto tempo, lascio il parassita 6 ore in alcool a 70, 6 in alcool a 90 e non più 
di 12 ore in alcool assoluto; da qui per il cloroformio (minuti 10) in paraffina e col 
metodo solito sezionando chiudo le sezioni in balsamo del canadà sciolto in xilol attac- 
candole sul portaoggetti con lo scellak. Con questo metodo mi è riuscito di ottenere 
delle buone preparazioni tanto da permettermi di continuare nelle mie ricerche. 
Descrizione del parassita. 
La Taenia bothrioplitis Piana è parassita del gallus domesticus. Sulla parete 
esterna del tubo intestinale, nel punto corrispondente a quello interno d’inserzione 
del parassita, si formano, secondo il Piana, dei piccoli tubercoli di diametro varia- 
bile fino ad 1 millimetro, e di color giallo grigio. Queste durezze avvertite dal tatto 
nel percorso del tubo intestinale, rivelerebbero la presenza del parassita. Non sempre 
