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d'uovo, cloruro di sodio gr. 1,50, acqua distillata gr. 250: sbatti e filtra. I preparati si 
possono conservare sottoponendoli ai vapori d’acido osmico e poi passandoli in glicerina. 
Se si vuol studiare il parassita malarico dal punto di vista citologico, riesce 
utile di isolare l’intestino in una soluzione di sublimato, nella quale poi si lascia 
per circa 2 ore; mi ha reso buoni servigi sopratutto la soluzione concentrata di 
sublimato coll'aggiunta di cloruro di sodio al !/» °/. Il sublimato alcolico acetico, 
il liquido di Flemming mi hanno dato risultati meno soddisfacenti, tranne che per 
lo studio particolare dei nuclei. Dopo il sublimato si usano gli alcool nel solito modo. 
Si ottengono buoni preparati trasportando gl’ intestini dall’ alcool in glicerina senza 
usare colorazione di sorta; il pigmento spicca benissimo. 
Per ulteriormente studiare il parassita malarico occorre sezionarlo, dopo averlo 
incluso in paraffina e far delle sezioni molto fine (da */, di w a 3-4 u). Si ottengono 
delle serie che si ricompongono; la difficoltà maggiore sta nel non lasciar piegare le 
sezioni più sottili, giacchè pur troppo anche fissandole con l’acqua molte si piegano. 
La colorazione si fa sul vetrino portoggetto coll’ ematossilina ferrica di Heiden- 
hain o coll’ emallume. 
I preparati d’intestino 77 foto o spaccati con una forbice molto delicata, riescono bene 
quando l'intestino è stato conservato in formalina. Accuratamente procedendo coll’ematos- 
silina ferrica suddetta, si arriva a colorire il parassita, lasciando 1’ epitelio dell'intestino 
incoloro 0 quasi; si ottengono dei bei preparati, purtroppo però alterati dalla formalina. 
Col metodo delle sezioni si possono anche studiare i parassiti mentre sono 
ancora nel lume dell'intestino in mezzo al sangue, in digestione più o meno avan- 
zata. Si isola perciò nel modo suddetto l'intestino medio, avendo cura di lasciar 
attaccata una porzione relativamente grande dell'intestino posteriore. 
Si ottengono buoni preparati anche colle sezioni dell’Anofele intiero: si cloro- 
formizza senza ucciderlo, gli si strappano ali e zampe e gli si versa sopra la solita 
soluzione di sublimato alcoolico-acetico bollente; prima che il liquido si raffreddi, 
il corpo dell’Anofele viene tagliato in 2 o 3 pezzi; si fanno i soliti passaggi e l'in- 
elusione in paraffina. Questo metodo è ottimo per determinar la posizione dei parassiti 
e sopra tutto per lo studio delle ghiandole salivali infettate. 
Gli sporozoiti (7) si studiano bene anche col metodo di Romanowski: si estrae 
l'intestino nella soluzione di cloruro di sodio 0,75 °/,, e con una leggera pressione 
si fanno uscire dalle capsule gli sporozoiti maturi; allora si diffonde pel liquido della 
preparazione un'enorme quantità di sporozoiti liberi. 
Si raccoglie una goccia di questo liquido su un vetrino portoggetti, sì fa disseccare 
e si fissa in alcool assoluto per 25 minuti, infine si lascia disseccare per 24 ore. 
La colorazione si fa nel modo solito adoperando le soluzioni dei colori nelle stesse 
proporzioni che per il sangue (soluzione di azzurro di metilene medicinale 10 °/,, 
cm? 2, eosina cristallizzata B 1 °/,, cm? 5): dopo un tempo variabile da mezz'ora a tre 
ore si hanno i preparati perfettamente colorati: la cromatina nucleare di solito prende 
il colore rosso-carminio, o porpora, il protoplasma un colore azzurro o azzurro-roseo. 
Lo stesso metodo si usa per istudiare’ gli sporozoiti nelle ghiandole salivali, e 
i parassiti, quando stanno ancora liberi in mezzo al sangue, più o meno digerito, 
contenuto nell'intestino. 
