610  R.Kräusel: Anatomie (Morphologie der Zelle sowie der Gewebe) 1923 [2 
6. Castren, H. Eine einfache Methode zum Bezeichnen be- 
stimmter Stellen in mikroskopischen Präparaten. (Ztschr. Wiss. 
Mikr. 40, 1923, 288—293, 2 Abb.) 
7. Cross, M. I. and Cole, M. J. Modern microscopy: a handbook 
for beginners and students. Fifth edition, revised and rearranged 
by H.F. Angus. (London, Bailliere, Tyndall and Co., 1922, X u. 315 S.) 
8. Deflandre, 6. Emploi de la nigrosine dans l’etude des 
algues inferieures. (Bull. Soc. Bot. France %0, 1923, 738—741.) — Der 
Farbstoff kann wie chinesische Tusche für die Demonstration einzelliger Algen 
benutzt werden und gibt auch gute Dauerpräparate. 
9. Denham, H. J. On some mounting media for microscopie 
objeets. (Journ. Roy. Mier. Soc. 1923, 190—197.) — Es werden eine ganze 
Reihe von Einbettungsmitteln mit ihrem Brechungsindex zusammengestellt. 
10. Denham, H. J. Reduction of microscope fatigue. (Bot. Gaz. 
76, 1923, 311— 315, 3 Abb.) — Ausgehend von dem Gedanken, daß Ermüdung 
beim Mikroskopieren in der Regel auf unzweekmäßiger Beleuchtung beruht, 
werden Vorschläge für geeignete Objektbeleuchtung gemacht. Am wichtig- 
sten ist die Möglichkeit, die Beleuchtung regulieren zu können. Dies kann 
mittels bestimmter Lichtfilter oder bei Benutzung einer elektrischen Lampe 
durch Zwischenschaltung eines Widerstandes erfolgen. Bei Benutzung des 
Zeichenprismas ist das von großem Werte. 
11. Drastieh, L. Eine bequeme Methode zum Einbetten in 
Paraffin mittels eines neukonstruierten Einbettungsapparates. 
(Ztsehr. Wiss. Mikr. 40, 1923, 362—-368, 3 Abb.) 
12. Ferrand, M.. Note pour servir A la technique microsco- 
pique des objets durs et specialement du bois. (Bull. Soc. Roy. Bot. 
Belgique 55, 1923, 89—90.) — Zum Aufweichen des Holzes vor dem Schnei- 
den wird Eau de Javelle empfohlen. 
13. Fitting, H., Jost, L., Schenk, H. und Karsten, 6 Lehrbuch der 
Botanik für Hochschulen. (16. Aufl., Jena 1923, 685 S., 844 Abb.) — 
Siehe Bot. Ctrbl., N. EF. 3, 257. 
14. Freund, H. Die Abhängigkeit der Zelldimensionen von 
Außenbedingungen. Versuche mit Oedogonium pluviale. (Ber. D. Bot. 
Ges. 41, 245— 252.) — Siehe die Abschnitte „Algen“ und ‚Physikalische Phy- 
siologie‘‘, ferner Bot. Ctrbl., N.F.3, 226. 
15. Gertz, V. Laboratorietekniska och mikrokemiska notiser. 
10. Om användningen av molybdänblätt i botanisk mikroteknik. 
(Bot. Not. 1923, 65— 98.) — Molybdänblau eignet sich sehr gut zum Färben 
tierischer wie pflanzlicher Schleime und pflanzlicher Gummi, ob diese nun 
von höheren Pflanzen stammen oder von niederen wie Phallus, Nostoc und 
Bakterien. Es wird Molybdänblau als Färbemittel empfohlen und seine 
Anwendbarkeit erläutert. Kerne, Zytoplasma, Chromatophoren, Aleuron- 
und Proteinkörner, Öle, Harze, Oxalatkristalle färben sich nicht, wohl aber 
Gummi und Schleimarten (mit Ausnahme der verschleimten Zellwände von 
Tilia). In den Schleimsäften verschiedener Monokotylen werden Fällungs- 
membranen gebildet. Stärkekörner reagieren normalerweise negativ. Wenn 
sie aber durch irgendeine Ursache zum Verkleistern gebracht werden, so färben 
sie sich sehr lebhaft. Auch Zellulose verhält sich bei beginnender Zersetzung 
ähnlich, z. B. nach Behandlung mit Schwefelsäure. Die übrigen Zelleinschlüsse 
dagegen bleiben ebenso wie verholzte oder verkorkte Zellwände unverändert. 
